Introduktion: Polymerase chain reaction (PCR) är en biokemisk och molekylärbiologisk laboratorieteknik som används för in vitro amplifiering av specifika gensekvenser. Det finns olika varianter av PCR, en mer utvecklad version är Realtids-PCR, även benämndkvantitativ PCR (qPCR). qPCR mäter fluorescensintensitet i varje qPCR cykel. Metoden delas in i fyra huvudfaser: linjär-, tidig exponentiell-, exponentiell- och platåfas. Syfte: Syftet med projektet var att utvärdera prestanda hos Quantstudio 7 vid varierande reaktionsvolym och plattposition, samt vid singleplex och duplex, för att öka kvaliteten på resultat och göra metoden mer kostnadseffektiv. Material & metod: Syntetisk DNA-sekvens (gBlock) späddes och sattes upp i en standardkurva med sju punkter och användes för 20 µl respektive 10 µl reaktionsvolymen, varje punkt bestod av 4 replikat. För att utvärdera Duplex vs Singelplex förbereddes standardkurva i kombination med en konstant koncentration av en annan assay. För att undersöka intra-plate variation sattes upp identiska reaktioner i samtliga brunnar i PCR-plattan. Resultat: Samtliga experiment gav detekterbara ampliferingsprodukter. Cq-värdet användes för att beräkna medelvärde och standardavvikelse, samt effektivitet och R2-värde Slutsats: Resultatet som erhålls från QS instrumentet visade att reaktionsvolymerna 10 µl och 20 µl är jämförbara. Duplex experimentet visade att gener med låg genuttryck kan duplexas med gener som har 10 000x högre genuttryck. Resultatet från intra-plate variation visade att variationen i SD var högre i den högre sidan av PCR-plattan. / Introduction: Polymerase chain reaction (PCR) is a biochemical and molecular laboratory technique that is used for amplification of specific gene sequences. There are different variants of PCR. A more developed version is quantitative PCR (qPCR). In qPCR the fluorescence intensity is measured in realtime during each qPCR cycle. Aim: The purpose of the project is to evaluate whether the reaction volume can be reduced by half, which leads to using less material and thus make the method more cost-effective. Matherial & method: Synthetic DNA sequence (gBlock) was diluted and set up in a standard curve with seven standards and used for 20 μl and 10 μl reaction volume, respectively. Each standard consisted of 4 replicates. To evaluate Duplex vs Singelplex, standard curve was prepared in combination with a constant concentration of another assay. To investigate intra-plate variation, identical reactions were set up in all wells of the PCR-plate. Results: All experiments yielded detectable amplification products. The Cq value was used to calculate the mean and standard deviation, as well as the efficiency and R2 value Conclusion: The obtained results showed that the reaction volumes 10 and 20 µl are comparable. In duplex assay, genes with low gene expression can be analyzed with genes that have 10,000x higher gene expression. In intraplate-assay variation, the variation in the standard deviation increased in the right side of PCR-plate.
| Identifer | oai:union.ndltd.org:UPSALLA1/oai:DiVA.org:oru-92903 |
| Date | January 2021 |
| Creators | Abucar, Ramla |
| Publisher | Örebro universitet, Institutionen för hälsovetenskaper |
| Source Sets | DiVA Archive at Upsalla University |
| Language | Swedish |
| Detected Language | English |
| Type | Student thesis, info:eu-repo/semantics/bachelorThesis, text |
| Format | application/pdf |
| Rights | info:eu-repo/semantics/openAccess |
Page generated in 0.0025 seconds