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Andréa Mendes Pereira Ativação de celulas... 2006.pdf: 40276494 bytes, checksum: 9f4656b98e4c74bae9c81e7797e85988 (MD5) / Made available in DSpace on 2012-11-27T17:22:07Z (GMT). No. of bitstreams: 1
Andréa Mendes Pereira Ativação de celulas... 2006.pdf: 40276494 bytes, checksum: 9f4656b98e4c74bae9c81e7797e85988 (MD5)
Previous issue date: 2006 / Fundação Oswaldo Cruz. Centro de Pesquisas Gonçalo Moniz. Salvador, Bahia, Brasil / Visando avaliar futuramente o potencial de citocinas na indução de resposta imune celular específica do tipo ThI quando associadas a antígeno(s) recombinante(s) de Leishmania chagasi/infantum no cão, a combinação de IL-2 e IL-12 caninas recombinantes é analisada no presente trabalho. Aqui, descrevemos a clonagem do DNA complementar (cDNA) e, pela primeira vez, a expressão de IL-2 canina recombinante biologicamente ativa em Escherichia coli e por células de mamífero. Para expressão em E. coli, utilizou-se a construção pRSET-calL- 2, anteriormente gerada por nosso grupo. Para expressão em células de mamíferos, foi realizada a clonagem do cDNA de IL-2, sintetizado por reação de transcrição reversa seguida de reação da polimerase em cadeia (RT-PCR) a partir do RNA total de células mononucleares do sangue periférico (CMSP) de cão estimuladas com concanavalina A (Con-A), no vetor pcDNAS.l, gerando a construção pcDNA3.1-caIL-2. O sucesso da clonagem em ambos os vetores de expressão foi confirmado a partir do sequenciamento de DNA e comparação dos resíduos de nucleotídeos com a seqüência de IL-2 canina previamente descrita por outro grupo de investigadores. A IL-2 canina recombinante (rcaIL-2) foi obtida como proteína de fiisão contendo cauda de histidina a partir da transformação de E. coli BL21(DE3)pLysS com pRSET- caIL-2, purificada por cromatografia de afinidade e renaturada por diálise. Além disso, a forma nativa de rcaIL-2 foi secretada no sobrenadante de cultura de células COS-7 transfectadas com a construção pcDNA3.1-caIL-2. A atividade proliferativa de rcaIL-2 sobre células CTLL-2 foi demonstrada em concentrações de até 220 pg/mL da citocina purificada a partir da expressão em E. coli e até a diluição de 1:256 do sobrenadante de COS-7 contendo rcaIL-2. A proteína biologicamente ativa foi capaz de manter a proliferação de CMSP de cães sadios por até 12 dias de cultivo quando as células foram tratadas com 50 ng/mL de IL-2 canina obtida de E. coli e por 10 dias com diluições de até 1:200 do sobrenadante de COS-7 contendo a citocina, na ausência de estímulo prévio ou concomitante. A proliferação foi dose-dependente, com ponto máximo ocorrendo no 8° dia de cultivo. A produção de interferon gama (IFN-y) por CMSP de cães sadios estimuladas com sobrenadante de COS-7 contendo IL-2 ou contendo IL-12 não foi significantemente maior que a produção basal. No entanto, um efeito sinérgico sobre a produção in vitro de IFN-y ocorreu quando concentrações subótimas de ambas as citocinas foram associadas. Diante dos resultados obtidos, a construção pcDNA3.1-caIL-2 e ambas as formas de IL-2 canina recombinante obtidas, assim como as condições experimentais aqui descritas, poderão ser utilizadas no futuro para o estudo do potencial de IL-2, associada ou não a IL-12, como modulador da resposta imune in vitro e in vivo de cães, durante o desenvolvimento de uma vacina ou imunoterapia para leishmaniose visceral canina. / Aiming to study in the fiiture the role of cytokines in inducing specific ThI cellular immune response when associated to Leishmania chagasi/infantum recombinant antigen(s) in dogs, the combination of recombinant canine IL-2 and IL-12 is analysed in the present study. Herein, we describe complementary DNA (cDNA) cloning and, for the first time, the expression of biologically active recombinant canine IL-2 in Escherichia coli and mammal cells. The construction pRSET-caIL-2, previously generated by our group, was used for E. coli expression. For mammalian expression, canine IL-2 cDNA was synthesized by reverse transcription followed by polymerase chain reaction (RT-PCR), using cDNA from a healthy dog’s peripheral blood mononuclear cells (PBMC) stimulated with concanavalin A (Con-A) and cloned into pcDNA3.1, generating the construction pcDNA3.1-caIL-2. Success in canine IL-2 cDNA cloning was accessed in both expression vectors by DNA sequencing and was confirmed by comparing nucleotides residues with canine IL-2 sequence previously described by other investigators. Recombinant canine IL-2 (rcaIL-2) was expressed as His-tag fiision protein after E. coli BL21(DE3)pLysS transformation with pRSET-caIL-2, purified by affinity chromatography and renatured through dialysis. In addition, the native form was secreted in culture supematants of pcDNA3.1-caIL-2 transfected COS-7 cells. A proliferative activity was demonstrated in CTLL-2 cells when the recombinant protein was diluted at 220 pg/mL of purified cytokine from E. coli expression or when COS-7 supernatant was diluted at 1:256. The biologically active protein was able to induce proliferation of PBMC of six healthy dogs until 12 days of culture when cells were treated with 50 ng/mL of E. coli expressed-IL-2 or until 10 days when treated with 1:200 COS-7 supernatant dilution containing the cytokine, without previous or concomitant stimulus. The proliferative effect was dose-dependent and maximum at 8th day of culture. Interferon-gamma (IFN-y) production by PBMC of eight healthy dogs induced by COS-7 IL-2 or IL-12-containing supematants was not significantly higher than the baseline production. However, the association of suboptimal concentrations of both cytokines induced synergistic effect upon in vitro IFN-y production by PBMC. Based on the presented results, the construction pcDNA3.1-caIL-2 or both recombinant protein forms obtained, as well as the experimental conditions described here, can be used in the future to evaluate the potential role of IL-2, associated or not to canine IL-12, as a modulator of in vitro and in vivo immune response of dogs during the development of a vaccine or immunotherapy for canine visceral leishmaniasis.
Identifer | oai:union.ndltd.org:IBICT/oai:www.arca.fiocruz.br:icict/5882 |
Date | January 2006 |
Creators | Pereira, Andréa Mendes |
Contributors | Reis, Alexandre Barbosa, Mengele Júnior, José Orivaldo, Oliveira, Geraldo Gileno de Sá, Oliveira, Geraldo Gileno de Sá |
Source Sets | IBICT Brazilian ETDs |
Language | Portuguese |
Detected Language | Portuguese |
Type | info:eu-repo/semantics/publishedVersion, info:eu-repo/semantics/masterThesis |
Source | reponame:Repositório Institucional da FIOCRUZ, instname:Fundação Oswaldo Cruz, instacron:FIOCRUZ |
Rights | Andréa Mendes Pereira, info:eu-repo/semantics/openAccess |
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