Sulfation of tyrosine residues is a post-translational modification that occurs on many secretory as well as transmembrane proteins. This modification is believed to be essential for numerous biological processes. However, one of the factors hindering the study of the significance of sulfotyrosine (sTyr) within a protein is the absence of a general method that enables the synthesis of sTyr peptides in satisfactory yields and purity. A general approach to the synthesis of sTyr-bearing peptides was developed in which the sTyr residue is incorporated into the peptides with the sulfate group protected. For the implementation of this general approach a new protecting group for sulfates, namely, the dichlorovinyl (DCV) group was developed. This was accomplished by conducting a careful analysis of the reaction of a trichloroethyl (TCE)-protected sulfate ester with piperidine and 2-methylpiperidine (2-MP). A unique sulfuryl imidazolium reagent, compound 2.22, was also developed that enabled the ready synthesis of DCV-protected sulfates. This reagent was used to prepare the amino acid building block FmocTyr(SO3DCV)OH (2.23). An alternative and more economical synthesis of FmocTyr(SO3DCV)OH (2.23) was also developed that did not require reagent 2.22. Fmoc-based solid phase peptide synthesis (SPPS) was used to incorporate 2.23 into peptides using 2-MP for Fmoc removal. After cleavage of the peptide from the support, the DCV group was removed by hydrogenolysis to give sTyr peptides in good yield and purity. Using this approach a variety of sTyr peptides were prepared including a tetrasulfated 20-mer corresponding to residues 14-33 in chemokine receptor D6 and a disulfated 35-mer corresponding to residues 8-42 of the N-terminus region of the chemokine receptor DARC and this is the largest multisulfated sTyr–bearing peptide made to date. It was also demonstrated that the incorporation of an important non-hydrolyzable sTyr analog, 4-(sulfonomethyl)phenylalanine (Smp), into peptides can be accomplished in good yield by protecting the sulfonate residue with a TCE group during SPPS. This approach was shown to be superior to the previously reported method where the sulfonate group is unprotected. Finally, a number of sulfotyrosine bearing peptides were synthesized and tested as protein tyrosine phosphatase-1B (PTP1B) inhibitors

Sulfation of tyrosine residues is a post-translational modification that occurs on many secretory as well as transmembrane proteins. This modification is believed to be essential for numerous biological processes. However, one of the factors hindering the study of the significance of sulfotyrosine (sTyr) within a protein is the absence of a general method that enables the synthesis of sTyr peptides in satisfactory yields and purity. A general approach to the synthesis of sTyr-bearing peptides was developed in which the sTyr residue is incorporated into the peptides with the sulfate group protected. For the implementation of this general approach a new protecting group for sulfates, namely, the dichlorovinyl (DCV) group was developed. This was accomplished by conducting a careful analysis of the reaction of a trichloroethyl (TCE)-protected sulfate ester with piperidine and 2-methylpiperidine (2-MP). A unique sulfuryl imidazolium reagent, compound 2.22, was also developed that enabled the ready synthesis of DCV-protected sulfates. This reagent was used to prepare the amino acid building block FmocTyr(SO3DCV)OH (2.23). An alternative and more economical synthesis of FmocTyr(SO3DCV)OH (2.23) was also developed that did not require reagent 2.22. Fmoc-based solid phase peptide synthesis (SPPS) was used to incorporate 2.23 into peptides using 2-MP for Fmoc removal. After cleavage of the peptide from the support, the DCV group was removed by hydrogenolysis to give sTyr peptides in good yield and purity. Using this approach a variety of sTyr peptides were prepared including a tetrasulfated 20-mer corresponding to residues 14-33 in chemokine receptor D6 and a disulfated 35-mer corresponding to residues 8-42 of the N-terminus region of the chemokine receptor DARC and this is the largest multisulfated sTyr–bearing peptide made to date. It was also demonstrated that the incorporation of an important non-hydrolyzable sTyr analog, 4-(sulfonomethyl)phenylalanine (Smp), into peptides can be accomplished in good yield by protecting the sulfonate residue with a TCE group during SPPS. This approach was shown to be superior to the previously reported method where the sulfonate group is unprotected. Finally, a number of sulfotyrosine bearing peptides were synthesized and tested as protein tyrosine phosphatase-1B (PTP1B) inhibitors

A simple method has been developed to determine amino acid loading in solid phase peptide synthesis. The method is applicable for the most common type of synthesis, which use FMOC as protective group and piperidine as a deprotecting agent. Both products of deprotection reaction are separated by HPLC and determined using an UV detector; an internal standard is added. The method gives true values that have been verified by an independent method. The RSD is 1.52%. The method is more accurate than the published methods and allows the determination from the waste of synthesis. The employing of the internal standard eliminated the necessity of dilution accuracy or known volumes.

La cromatografía de líquidos de alta resolución (HPLC) es sin dudas, una técnica madura, ampliamente usada en laboratorios analíticos, especialmente en el modo de fase inversa. Existe, no obstante, una demanda creciente de métodos rápidos de separación y cuantificación de analitos mediante HPLC, especialmente en laboratorios que deben implementar rutinas de análisis. La disminución en los tiempos de análisis puede lograrse usando columnas más cortas y trabajando a altos caudales, a expensas de la capacidad resolutiva del sistema. Para mantener una capacidad de resolución dada se reduce el tamaño de las partículas de relleno, lo cual limita la longitud de la columna y la velocidad lineal que es posible usar para mantener una caída de presión soportable por un sistema de bomba típico de un equipo HPLC. Estas limitaciones han dado lugar a numerosas investigaciones que permitieron mejoras instrumentales y el desarrollo de nuevos materiales. Entre las mejoras instrumentales se destaca la aparición de una nueva generación de equipos que poseen bombas capaces de proveer fase móvil a caudales razonables y a presiones de más de 1000 atm. Estos instrumentos, que se conocen como U-HPLC o UPLC por “ultra-high pressure liquid chromatography” poseen un costo sumamente elevado, convirtiéndose en poco accesibles en muchos laboratorios. Los estudios y desarrollos de diferentes materiales han dado lugar a las columnas monolíticas en las que una sola pieza altamente porosa (monolito) de material silíceo o polimérico constituye la matriz de la fase estacionaria en reemplazo de las típicas partículas porosas empleadas para desarrollar fases estacionarias. La estructura de este monolito posee una porosidad superior al 80% (en comparación al 60-65% de porosidad total de las columnas basadas en partículas porosas), lo que implica mayores permeabilidades del lecho y, en consecuencia, que se pueda aumentar la velocidad de fase móvil sin que se produzcan grandes caídas de presión. Por otra parte, su estructura macroporosa permite el flujo convectivo de solvente, por lo que el transporte de material hasta la superficie estacionaria resulta más eficiente que el mecanismo difusivo, produciendo menores resistencias a la transferencia de material, esto es, la pérdida de eficiencia a altos caudales no es tan significativa. Otro tipo de material particulado recientemente desarrollado consiste en esferas de sílice compacta (no porosa) de menos de 2 micras cubiertas de una superficie porosa de un espesor de aproximadamente 0,5 micras. Las partículas poseen un diámetro total de algo más de 2,5 micrones. Este material constituye el relleno de la columna cromatográfica, teniendo la ventaja de que la resistencia que ejerce a la aplicación de caudales normales es mucho menor que la de partículas menores a 2 micras. Por otra parte, el hecho de que el intercambio entre las fases ocurra sólo en la “cáscara” porosa, disminuye sensiblemente la resistencia a la transferencia de materia, por lo que las eficiencias serían similares a las de partículas de tamaños inferiores a 2 micrones. Una estrategia diferente en relación con la posibilidad de reducir tiempos de análisis empleando instrumentos convencionales consiste en emplear partículas de sílice de diámetro reducido y simultáneamente aumentar la temperatura de la columna. La consecuencia hidrodinámica es una disminución en la viscosidad del eluyente, con la consecuente disminución en la caída de presión desarrollada, y el aumento en los coeficientes de difusión de los analitos, lo que implica mejoras en la transferencia de materia en fase móvil. Esta estrategia ha sido estudiada en relación con columnas rellenas con material particulado y también con columnas monolíticas a base de sílice. Un objetivo de este trabajo ha sido el de avanzar hacia el desarrollo de metodologías cromatográficas que tiendan a la miniaturización, esto es, métodos de cromatografía de líquidos en los que se reduzcan significativamente los volúmenes de solventes y de muestra a inyectar, y al aumento de la velocidad de análisis, esto es, a reducir tiempos de análisis por muestra, pero empleando instrumentos de cromatografía convencionales con mínimas modificaciones. Entendemos que la disponibilidad de instrumentos de UPLC para lograr estos objetivos no es frecuente en la mayoría de los laboratorios, por lo que es nuestro interés la búsqueda de alternativas más accesibles al desarrollo de métodos rápidos y en escala de micro-LC. En relación con la aplicación de estas metodologías a muestras reales se estudió la separación y análisis de aminoácidos derivatizados con cloruro de FMOC (cloroformiato de 9-fluorenilmetilo), con el fin de tener un método robusto y de bajo costo de análisis de los aminoácidos citrulina, arginina, prolina, glutamina, ácido glutámico y ornitina en fluido plasmático. La posible transferencia del método a laboratorios de rutina implica que los métodos a desarrollar sean robustos y generales, esto es, que el derivado pueda detectarse por uv-visible y por fluorescencia, que el proceso pueda automatizarse, y que se empleen reactivos fácilmente manipulables. Importancia de medir la concentración de citrulina en plasma. En el intestino delgado se produce la absorción de nutrientes y las transformaciones metabólicas en las que el epitelio intestinal cumple un papel fundamental. Entre ellas ocurre la transformación de glutamina en citrulina, la cual es adsorbida hacia el plasma. Los niveles de citrulina circulantes dependen principalmente de la capacidad del intestino en producirla a partir de sus precursores, por lo que se ha propuesto emplear a esta sustancia como un indicador de la funcionalidad enterocitaria. Distintas condiciones que alteren la fisiología de la mucosa intestinal serían potencialmente reflejadas en alteraciones en los niveles de citrulina plasmática. Se ha propuesto en la literatura evaluar los niveles de citrulina plasmática como marcador específico de disfunción intestinal (al igual que se usa creatinina como marcador de disfunción renal o las enzimas TGO/TGP para anomalías a nivel hepático). Sin embargo, hasta el momento no existe acuerdo al respecto dado los resultados informados del dosaje de citrulina en distintas patologías en las que se compromete el tejido intestinal. La determinación de citrulina en plasma desproteinizado se puede realizar por CEC, CE, mediante HPLC, empleando columnas de fase inversa y derivatización pre- o post-columna del grupo amino para su detección. Muchos de estos métodos, poseen procedimientos experimentales complejos. Como reactivos derivatizantes se pueden emplear diversos compuestos, siendo el o-ftaldehído en combinación con 2-mercaptoetanol el descripto con mayor frecuencia. Si bien esta reacción de derivatización es rápida, los derivados formados no son estables, lo que convierte al método en poco robusto. En este trabajo se propuso estudiar la derivatización con FMOC-Cl. El uso de este agente derivatizante permite llevar a cabo reacciones rápidas de condensación con el grupo amino para dar el correspondiente carbamato, a temperatura ambiente; y los derivados obtenidos son estables. Por fluorescencia pueden detectarse niveles de analito de fmol y también, aunque con mayores límites de detección, pueden cuantificarse por absorción UV.

In this work, an enantioselective HPLC method with UV and fluorimetric detection was developed and subsequently optimized for chiral separation of four aminoacids (D/L-alanine, D/L-valine, D/L-leucine, D/L-isoleucine) in native and particularly in derivatized form with an emphasis on enantioseparation of D-analogues. Retention and enantioseparation behavior of studied analytes was investigated on three chiral stationary phases based on teicoplanin (Chirobiotic T, Chirobiotic T2) and teicoplanin aglycone (Chirobiotic TAG). At the Chirobiotic T column, enantioseparations of underivatized aminoacids were performed with UV detection at 205 nm in the mobile phases methanol/water with different volume ratios. Baseline separation of L- and D-forms was achieved, however, the sensitivity of detection was very low. In order to increase detection sensitivity, derivatization of aminoacids was performed using 9-fluorenylmethyl chloroformate (FMOC-Cl) and the derivatization procedure was monitored on Chirobiotic T column with fluorimetric detection (λEx = 254 nm, λEm = 314 nm) in a buffered mobile phase methanol/0.5% TEAA buffer, pH 6.0 40/60 (v/v). In terms of derivatization, volume ratio D/L-aminoacid/derivatization agent 1/1 with ten times higher concentration of derivatization agent was found to be the most suitable....

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