Orientadores: Konradin Metze, Miriam Aparecida da Silva Trevisan / Dissertação (mestrado) - Universidade Estadual de Campinas, Faculdade de Ciencias Medicas / Made available in DSpace on 2018-08-01T21:40:37Z (GMT). No. of bitstreams: 1 Sa_AngelaCurydeMello_M.pdf: 10579190 bytes, checksum: 3e04615de323eedfeef98ac978015de8 (MD5) Previous issue date: 2001 / Resumo: A saponina é um grupo de hemolisinas enzimáticas derivado de uma variedade de plantas, pode ser útil na preparação de amostras hemorrágicas, limpando as hemácias do material de fundo da lâmina. O objetivo de nosso estudo foi investigar se a saponina pode ser usada na remoção de hemácias do material de fundo na rotina, esfregaços citológicos secos ao ar em comparação com fixados imediatamente. A preparação de amostra citológica de figado e linfonodo de cães foi realizada em quadruplicata (imediatamente após a morte do animal) e processada da seguinte maneira: 1. Grupo SFX - Esfregaços foram imediatamente colocados na solução fixadora SFX, composta por 1:1 de álcool a 95% e de formalina tamponada ,e 0,1% de saponina. 2. Coloração convencional (SE) - Esfregaços foram deixados secar ao ar por 30 minutos depois corados por Leishmann. 3. Pós-fixação com álcool 95% (AL) - Esfregaços secos ao ar foram reidratados e incubados em solução de saponina a 0,1%. Depois fixados em álcool 95% e corados pela técnica de coloração modificada GiemsalHematoxilina-Eosina. 4. Pós-fixação com álcool-formol (ALFO) - Esfregaços secos ao ar foram reidratados e incubados em solução de saponina a 0,1%. Depois fixados em álcool-formol e corados pela técnica de coloração modificada Giemsa/Hematoxilina-Eosina...Observação: O resumo, na íntegra, poderá ser visualizado no texto completo da tese digital / Abstract: Saponins, a group of enzyrnatic hemolysins derived from a variety of plants, may be helpful in the preparation of hemorrhagic cell samples by clearing the background. The aim of our study was to investigate, whether saponin may be helpful in removing the red cell background in routine, air-dried cytologic preparations in comparison with immediately fixed slides. Cytologic touch preparations from liver and lymph nodes from mongrel dogs were processed as following: 1. SFX group - Smears were immediately put into the fixative SFX, composed of an aqueous, phosphate buffered solution containing 50% ethanol and 2% formldehyde and 0,1% saponin. 2. Conventional staining (SE) - Smears were air-dried for at least 30 minutes and than stained according to Leishmann. 3. Alcohol- postfixation (AL) - Air dried smears were rehydrated and incubated in a 0,1% saponin solution and then fixed in 95% alcohol and stained with the modified Giemsa-haematoxilin staining. 4. Formol-Alcohol postfixation(FoAL)- Air dried smears were rehydrated and ineubated in a 0,1% saponin solution and then fixed in formalin-alcohol solution and stained with the modified Giemsa-haematoxilin staining...Note: The complete abstract is available with the full electronic digital thesis or dissertations / Mestrado / Anatomia Patologica / Mestre em Ciências Médicas

Submitted by Marco Antônio de Ramos Chagas (mchagas@ufv.br) on 2018-10-23T11:04:04Z No. of bitstreams: 1 texto completo.pdf: 1777798 bytes, checksum: 8f63dca2c5014c6dd12f4d0bb513c43c (MD5) / Made available in DSpace on 2018-10-23T11:04:04Z (GMT). No. of bitstreams: 1 texto completo.pdf: 1777798 bytes, checksum: 8f63dca2c5014c6dd12f4d0bb513c43c (MD5) Previous issue date: 2018-07-20 / Coordenação de Aperfeiçoamento de Pessoal de Nível Superior / A exposição ao formaldeído é reconhecidamente um dos mais importantes fatores de risco presentes nos laboratórios de anatomia e de patologia, por ser um produto tóxico, carcinogênico e teratogênico. O formaldeído é utilizado em solução comercial, normalmente diluída a 10%, designada comumente por formol. Trata-se de uma solução pouco onerosa e extremamente eficiente para preservação de peças anatômicas e de tecidos. Na busca de técnicas conservativas em substituição ao formaldeído, a plastinação é um método inovador de conservação de peças anatômicas, que substitui a água e a gordura dos tecidos por um polímero curável, para a etapa de conservação de peças cadavéricas. Porém, a plastinação prescreve o uso do formol na etapa de fixação. Um estudo comparativo, sobre a ação de três fixadores utilizados em tecidos previamente plastinados, foi realizado a fim de avaliar qualitativamente a preservação de características histológicas de nove órgãos, ao microscópio de luz (ML). Artéria, esôfago, fígado, intestino delgado, intestino grosso, músculo estriado esquelético, nervo periférico, pâncreas e traqueia de equino foram coletados, fixados em três diferentes soluções fixadoras (formaldeído 10%, formaldeído 2,5% e solução de Cambridge). Após fixação, foram preparados para procedimentos de plastinação com silicone S10 Biodur ® , os quais foram submetidos ou não à etapa de cura. Após o término da plastinação, metade das amostras dos tecidos foi desplastinada em solução de metóxido de sódio 5% em metanol e processada para rotina histológica. A outra metade passou por um processo de maturação durante 04 meses, para depois ser desplastinada e processada para rotina histológica. Este estudo mostrou que a solução fixadora de formaldeído 10% apresentou melhores qualificações para análises histológicas dos tecidos plastinados, que foram submetidos ou não ao processo de cura, seguidos do processo de desplastinação. Mostrou também que a solução fixadora de Cambridge apresentou as melhores qualificações para análises histológicas dos tecidos plastinados, submetidos ou não ao processo de cura, maturados e desplastinados. / The exposition to formaldehyde is admittedly one of the most important risk factors present in the anatomy and pathology laboratories, since it is a toxic, carcinogenic and teratogenic product. Formaldehyde is used in commercial solution, normally diluted at 10%. This is a very cheap and extremely efficient solution used to preserve the anatomic pieces and tissues. Searching for conservative techniques to substitute the formaldehyde, plastination is an innovative method to conserve anatomic pieces that can substitute water and the tissue fat by a curable polymer, for the state of conservation of cadaveric pieces. However, plastination prescribes the usage of formaldehyde in the fixation stage. A comparative study regarding the action of three fixers used in tissues which were previously plastinated, was done in order to qualitatively evaluate the preservation of histological characteristics of nine organs using the light microscope (LM). Artery, esophagus, liver, small intestine, large intestine, skeletal striated muscle, peripheral nerve, pancreas and equine trachea were collected, fixed in three different fixing solutions (formaldehyde 10%, formaldehyde 2.5% and Cambridge solution). After fixation, they plastination procedures were prepared with silicon S10 Biodur ® , which were submitted or not to the cure stage. After the end of plastination, half of the tissue samples was deplastinated in solution of sodium methoxide 5% in methanol and processed for histological routine. The other half went through a maturation process during 04 months, and only after that they were deplastinated and processed for histological routine. This study showed that the fixative solution of formaldehyde 10% presented better qualification for histological analyses of the plastinated tissues, which were submitted or not to the cure process, followed by the deplastination process. It has also showed that the Cambridge fixative solution presented better qualification for the histological analyses of the plastinated tissues, which were submitted or not to the cure process, then matured and deplastinated.