Neisseria gonorrhoeae (NG) har successivt utvecklat resistens mot många antimikrobiella medel och betraktas som ett av de tre reella hoten bland antibiotikaresistenta bakterier. Ciprofloxacin är ett bredspektrum-antibiotikum tillhörande gruppen kinoloner som, förutom att behandla urinvägsinfektioner, används mot NG och infektioner i mage och tarm. Dock har det rapporterats att ca 30 % av NG-isolat som samlats in genom gonokock-isolatövervakningsprojekt (GISP) under 2017 var resistenta mot ciprofloxacin. På molekylnivå är resistens mot ciprofloxacin starkt associerad med en enda mutation i kodon 91 i gyras-genen (gyrA). Detta projekt har undersökt om det går att använda molekylärbiologiska metoder för att detektera NG-isolat med gyrA mutationen. Analysen gjordes med två olika PCR-system, ”7500 Fast Real-Time PCR System” från Applied Biosystems (ABI) och Panther Fusion från Hologic. Proberna som användes designades för påvisning av vildtyp gyrA (ciprofloxacin-känslig) och mutant gyrA (ciprofloxacin-resistent) hos NG. I projektet analyserades 50 NG-positiva prov (analyserade med screeningtest APTIMA COMBO2 från Hologic), från 43 patienter som provtagits under januari-februari 2020 i Region Skåne. Några patienter testades flera gånger vid olika tillfällen. NG-odling hade utförts parallellt från motsvarande tagna prov från patienterna. ABI-metoden påvisade genen hos 90 % (45/50) av NG-positiva prover (APTIMA COMBO2) medan endast 24 av de 49 proven (49 %) kunde odlas med traditionell metodik för att därefter resistensbestämmas. Av de 45 prov där gyras-genen kunde detekteras med ABI-metoden, uppvisade 28 (62 %) av proven en muterad gen och därmed en potentiell resistens för ciprofloxacin. Panther Fusion-metoden påvisade genen hos 80 % (40/50) av NG-positiva prover (APTIMA COMBO2), och såsom tidigare nämnts, kunde endast 24 av de 49 proven (49 %) odlas med traditionell metodik för att därefter resistensbestämmas. Av de 40 prov där gyras-genen kunde detekteras med Panther Fusion-metoden, uppvisade 26 av proven (65 %) en muterad gen och därmed en potentiell resistens för ciprofloxacin. En jämförelse mellan resultaten från PCR-metoderna och odlingarna visar att av de 24 odlingarna som kunde resistensbestämmas fick ABI-metoden resultat för 23 och Panther Fusion för 22. PCR-metodernas resultat överensstämde perfekt med resultaten från odling med samma 8 känsliga och 15 respektive 14 resistenta NG-isolat som odling. De båda PCR-metoderna och traditionell odling uppvisade jämförbara resultat. Av de 24 prov som kunde odlas och därmed resistensbestämmas, detekterades med ABI-metoden gyras-genen i 23 av dessa prov och i 22 av proven med Panther Fusion-metoden. Resistens mot ciprofloxacin uppvisades genom odling i 16 av de 24 odlingsbara prov, och av dessa 24 odlingsbara prov uppvisade ABI-metoden en muterad gen i 15 av proven och Panther Fusion-metoden en muterad gen i 14 av proven. Traditionell odling kunde bara genomföras på 24 av proven och PCR-metoderna identifierade signifikant fler prov innehållande vildtyp eller muterad gyras-gen, 45 respektive 40 prov. Projektet visade tydligt att PCR-metoderna kan identifiera fler prov än genom traditionell odling och kan därmed upptäcka fler prov med förväntad ciprofloxacin-resistens än vad som kan bestämmas genom traditionell odling. / Neisseria gonorrhoeae (NG) has been developing a resistance towards several different antibiotics and is viewed as one of the three real threats among resistant bacteria. Ciprofloxacin is a broad-spectrum-antibiotic belonging to the group quinolone antibiotics which, in addition to being used to treat urinal infections, is used to treat NG and infections in the stomach and intestines. However, it has been reported that 30 % of NG-isolates that have been gathered through the Gonococcal Isolate Surveillance Project (GISP) throughout 2017 were resistant to ciprofloxacin. On a molecular level, resistance to ciprofloxacin is strongly associated with a single mutation in kodon 91 in the gyras-gene (gyrA). This project sought to examine if it is possible to use methods from molecular biology to detect which NG that have the gyrA-mutation. The test was done using two different PCR-systems, ”7500 Fast Real-Time PCR System” from Applied Biosystems (ABI) and Panther Fusion from Hologic. The probes used were designed to show wild type gyrA (ciprofloxacin sensitive), and mutated gyrA (ciprofloxacin resistant) in NG. In this project 50 NG-positive samples (analysed with screentest APTIMA COMBO2 from Hologic), from 43 patients that had been tested during January-February 2020 in Region Skåne, were analysed. Some patients were tested several times, within the time period. NG-cultivation had been done in parallel from corresponding samples taken from the patients. The ABI-method showed the gene in 90 % (45/50) of NG-positive samples (APTIMA COMBO2) while only 24 of the 49 samples (49 %) could be cultivated by traditional methodology, and then tested for resistance. Of the 45 samples where the gyras-gene could be detected with the ABI-method, 28 samples (62 %) exhibited a mutated gene and thus a potential resistance to ciprofloxacin. The Panther fusion-method showed the gene in 80 % (40/50) of NG-positive samples (APTIMA COMBO2), and as mentioned earlier, only 24 of the 49 samples (49 %) could be cultivated by traditional methodology to then be tested for resistance. Of the 40 samples where the gyras-gene could be detected with the Panther Fusion-method, 26 samples (65 %) exhibited a mutated gene and thus a potential resistance to ciprofloxacin. The two PCR-methods and traditional cultivation exhibited comparable results. Of the 24 samples that could be cultivated and thus tested for resistance, the ABI-method detected the gyras-gene in 23 of these samples and the Panther Fusion-method detected the gene in 22 of the samples. Cultivation exhibited resistance to ciprofloxacin in 16 of the 24 samples that could be cultivated, and of these 24 cultivatable samples the ABI method exhibited a mutated gene in 15 of the samples and the Panther Fusion-method exhibited a mutated gene in 14 of the samples. Traditional cultivation could only be done on 24 of the samples and the PCR-methods could identify significantly more samples containing either wild type or mutated gyras-gene, 45 and 40 samples, respectively. The project clearly showed that more samples can be identified with the PCR-methods than through traditional cultivation, and thereby discover more samples with expected ciprofloxacin-resistance, than can be determined through traditional cultivation.

Panther Fusion® system är ett fullständigt automatiserat in vitro diagnostiksystem som har högt flöde av prov-till-resultat och tillåter utförandet av in vitro diagnostiska tester genom användning av realtids Polymerase Chain Reaction (realtids-PCR). Syftet med detta projekt är att validera om det finns möjlighet att använda ett kit från Amplidiag på Panther fusion open access för att diagnostisera vankomycin resistenta enterokocker (VRE) samt att utvärdera analys direkt på E-swab prover istället för anrikningsbuljong. Det är viktigt att kunna detektera vanA-och vanB-generna i prover för att VRE hyser dessa gener. Sensitivitet och effektivitet av Panther fusion open access undersöktes genom att analysera proverna parallellt med Bio-Rad CFX384/96-PCR som är rutinmetoden för VRE-diagnostik på Klinisk mikrobiologi i Lund. Specificitet av en tidigare publicerad PCR-mix (PCR-mix) som kan detektera vanA och vanB i prover jämfördes med Amplidiag assay mix 2 som används i rutinmetoden. För att kunna utvärdera skillnaden av specificiteten och känsligheten mellan E-swab och anrikningsbuljong utfördes analysen på både E-swab och anrikningsbulong med både Panther fusion open access och Bio-Rad CFX384/96-PCR. MgCl2- koncentration optimerades till 3,0 mM. Sensitivitet och effektivitet av Panther fusion open access var högre med PCR-mix än Amplidiag assay mix 2 och uppvisade optimalt linjäritet. Specificitetstest av PCR-mixen visade att den bara kunde detektera vanA och vanB. Resultaten av spikade VRE-negativa patientprover (E-swab) visade sig vara orimliga då flera av proverna och kontrollerna gav resultat för båda generna. För att ersätta VRE-diagnostik på Bio-Rad CFX384/96 med Panther fusion open access behöver ytterligare experiment genomföras direkt på E-swab och vankomycine variabla enterokocker (VVE)-prover på Panther fusion open access. / Panther Fusion® system is a fully automated in vitro diagnostic system that has a high flow of sample-to-results and allows the performance of in vitro diagnostics tests using real-time Polymerase Chain Reaction (real-time PCR). The purpose of this project is to validate whether it is possible to use a kit from Amplidiag on Panther fusion open access to diagnose vancomycin resistant enterococcus (VRE). In addition, this project aims to evaluate and analyze E-swab samples directly instead of enrichment broth. It is important to be able to detect VanA and VanB genes in samples because VRE harbors these genes. Sensitivity and efficiency of Panther fusion open access were tested by analyzing the samples simultaneously with Bio-Rad CFX384/96 which is the routine method for VRE diagnostic at Clinical Microbiology in Lund. Specificity of a previously published PCR-mix (PCR-mix) that can detect VanA and VanB genes in samples was compared with Amplidiag assay mix 2 used in the routine method. In order to evaluate the difference in specificity and sensitivity between E-swab and enrichment broth, the analysis was performed on both E-swab and enrichment broth with both Panther fusion open access and Bio-Rad CFX384/96-PCR. MgCl2 concentration was optimized to 3,0 mM. Both sensitivity and efficiency of Panther fusion open access were higher with PCR-mix than those with Amplidiag assay mix 2 and it showed optimal linearity. Specificity test of PCR-mix detected only VanA and VanB genes. The results of inoculated the negative VRE-patient samples (E-swab) indicated that they were unreasonable because some of the samples and controls gave results of both genes. Replacement of the VRE-diagnostic method on Bio-Rad CFX384/96 with Panther fusion open access requires performing additional experiments directly on E-swab and vancomycin variable enterococcus (VVE) samples using Panther fusion open access.

Hansson, L. Detektion av makrolidresistens hos Mycoplasma genitalium med Panther Fusion. Examensarbete i biomedicinsk laboratorievetenskal 15 högskolepoäng. Malmö universitet: Fakulteten för hälsa och samhälle, institutionen för Biomedicinsk Vetenskap, 2023.   Mycoplasma genitalium är en sexuellt överförbar mikroorganism som infekterar både män och kvinnor, som behandlas oftast med azitromycin med ett ökande problem av antibiotikaresistens. För M. genitalium är makrolidresistens det främsta hotet mot behandling, och har kopplats till fyra punktmutationer i region V i 23S rRNA-genen: A2071G, A2072G, A2072C samt A2071T (M. genitalium G-37, GenBank NR_077054.1). Projektet har undersökt möjligheten att ersätta nuvarande in house realtids-PCR metod för makrolidresistensbestämning med ett integrerat nukleinsyra-reningssteg och realtids-PCR med Panther Fusion (Hologic) hos Klinisk mikrobiologi i Lund. Under projektet analyserades 55 patientprover som samlades under perioden januari-februari 2023 i Region Skåne, som blivit positiva vid M. genitalium testning. Dessa prover har därefter analyserats av personal med nuvarande ABI-metod för resistensbestämning och sedan analyserats på Panther Fusion. Nuvarande ABI-metod resulterade i positiv signal för 91% (50/55) av patientprover positiva vid M. genitalium analys och makrolidresistensmutation hos 25 % (14/55), medan Panther Fusion metoden resulterade i positiv signal för 81 % (45/55) av positiva M. genitalium prover och påvisade resistensmutation hos 20 % (11/55) av proverna.