Mémoire numérisé par la Direction des bibliothèques de l'Université de Montréal.

Mémoire numérisé par la Direction des bibliothèques de l'Université de Montréal.

Les acides ribonucléiques (ARN) forment des structures tri-dimensionnelles complexes stabilisées par la formation de la structure secondaire (2D), elle-même formée de paires de bases. Plusieurs méthodes computationnelles ont été créées dans les dernières années afin de prédire la structure 2D d’ARNs, en partant de la séquence. Afin de simplifier le calcul, ces méthodes appliquent généralement des restrictions sur le type de paire de bases et la topologie des structures 2D prédites. Ces restrictions font en sorte qu’il est parfois difficile de savoir à quel point la totalité des paires de bases peut être représentée par ces structures 2D restreintes. MC-Unfold fut créé afin de trouver les structures 2D restreintes qui pourraient être associées à une structure secondaire complète, en fonction des restrictions communément utilisées par les méthodes de prédiction de structure secondaire. Un ensemble de 321 monomères d’ARN totalisant plus de 4223 structures fut assemblé afin d’évaluer les méthodes de prédiction de structure 2D. La majorité de ces structures ont été déterminées par résonance magnétique nucléaire et crystallographie aux rayons X. Ces structures ont été dépliés par MC-Unfold et les structures résultantes ont été comparées à celles prédites par les méthodes de prédiction. La performance de MC-Unfold sur un ensemble de structures expérimentales est encourageante. En moins de 5 minutes, 96% des 227 structures ont été complètement dépliées, le reste des structures étant trop complexes pour être déplié rapidement. Pour ce qui est des méthodes de prédiction de structure 2D, les résultats indiquent qu’elles sont capable de prédire avec un certain succès les structures expérimentales, particulièrement les petites molécules. Toutefois, si on considère les structures larges ou contenant des pseudo-noeuds, les résultats sont généralement défavorables. Les résultats obtenus indiquent que les méthodes de prédiction de structure 2D devraient être utilisées avec prudence, particulièrement pour de larges molécules. / Ribonucleic acids (RNA) adopt complex three dimensional structures which are stabilized by the formation of base pairs, also known as the secondary (2D) structure. Predicting where and how many of these interactions occur has been the focus of many computational methods called 2D structure prediction algorithms. These methods disregard some interactions, which makes it difficult to know how well a 2D structure represents an RNA structure, especially when large amounts of base pairs are ignored. MC-Unfold was created to remove interactions violating the assumptions used by prediction methods. This process, named unfolding, extends previous planarization and pseudoknot removal methods. To evaluate how well computational methods can predict experimental structures, a set of 321 RNA monomers corresponding to more than 4223 experimental structures was acquired. These structures were mostly determined using nuclear magnetic resonance and X-ray crystallography. MC-Unfold was used to remove interactions the prediction algorithms were not expected to predict. These structures were then compared with the structured predicted. MC-Unfold performed very well on the test set it was given. In less than five minutes, 96% of the 227 structure could be exhaustively unfolded. The few remaining structures are very large and could not be unfolded in reasonable time. MC-Unfold is therefore a practical alternative to the current methods. As for the evaluation of prediction methods, MC-Unfold demonstrated that the computational methods do find experimental structures, especially for small molecules. However, when considering large or pseudoknotted molecules, the results are not so encouraging. As a consequence, 2D structure prediction methods should be used with caution, especially for large structures.

Thèse numérisée par la Direction des bibliothèques de l'Université de Montréal. / La détermination des structures tertiaires des protéines par rayons X a pour but de nous apporter des connaissances détaillées sur leur repliement et de comprendre la relation entre leur structure et leur fonction. Nous allons montrer par la présente étude comment la cristallographie jumelée à la mutagenèse dirigée peut être utilisée dans la détermination et la compréhension du mécanisme enzymatique de l'aldolase du muscle de lapin. Les différentes mutations générées visent des acides aminés qui sont, dans la plupart des cas, situés dans le site actif et qui sont impliqués dans la catalyse enzymatique. Certains mutants de l'aldolase du muscle sont analysés par des méthodes cristallographiques, cinétiques, enzymatiques et d'échanges isotopiques. L'enzymologie nous a permis de déterminer les paramètres cinétiques de ces mutants, afin d'établir leur rôle dans la réaction enzymatique. L'étude structurale permet d'avoir une vision directe des types d'interactions au sein d'une enzyme. L'interprétation des données structurales associée aux données cinétiques permet d'analyser avec pertinence la fonction des résidus impliqués dans le mécanisme catalytique de l'aldolase du muscle de lapin. Dans le but de connaître l'implication de certains résidus dans le mécanisme catalytique, nous nous sommes focalisés sur l'étude structurale de plusieurs mutants. Les principaux intérêts de ce travail consistent à connaître si la perte d'activité est directement liée à la mutation ou à un changement global de la structure engendrée par celle-ci, à déterminer la structure mutante formant un complexe avec le substrat ou le produit de la réaction catalytique ainsi qu'a connaître le lien entre l'affinité pour le substrat et un acide aminé bien spécifique. La réponse à toutes ces questions nous a amenés à la résolution des structures cristallographiques de certains mutants. La cristallographie qui donne une vision directe des interactions entre les acides aminés est un puissant outil qui nous renseigne sur la nature et le mode d'action des résidus. Les résultats structuraux nous ont permis de tirer plusieurs conclusions sur la relation structure/fonction de cette enzyme et de déterminer la nature et le rôle des résidus impliqués dans la catalyse, ainsi que ceux impliqués dans sa conformation. Ces méthodes nous ont également permis de proposer un nouveau modèle du mécanisme enzymatique. Nous discuterons aussi des problèmes liés à la cristallisation des protéines et les méthodes récentes appliquées pour les contourner.