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Controle esteroidogênico da diferenciação sexual intrauterina em Galea spixii / Steroidogenic control of intrauterine sexual differentiation in Galea spixii

Santos, Amilton Cesar dos 20 December 2016 (has links)
Os Galea spixii são roedores que tem despertado o interesse de pesquisadores devido ao seu peculiar dimorfismo sexual, uma vez que, as fêmeas possuem a genitália externa com características masculinizadas. O objetivo da presente pesquisa foi estabelecer os parâmetros morfológicos do desenvolvimento e diferenciação sexual de machos e fêmeas durante o período intrauterino e as possíveis fontes de produção de hormônios andrógenos e estrógenos durante a gestação. Foram utilizados conceptos provenientes de 30 fêmeas gestantes. Foi descrita a concentração hormonal das gestantes. Em seguida, os órgãos genitais dos conceptos foram analisados macroscopicamente e microscopicamente. E, para detectar possíveis fontes de andrógenos e estrógenos, as placentas, ovários e testículos foram submetidos a técnicas imunológicas de detecção de enzimas esteroidogênicas. Aos 25 dias de gestação (DG) se inicia o processo de diferenciação sexual das gônadas (para formar os ovários ou os testículos) e da genitália externa. O tubérculo genital sofre a canalização da uretra aos 30 DG para formar o pênis nos machos e aos 40 DG para formar o clitóris das fêmeas. Nos machos, a partir dos ductos mesonéfricos, se diferenciam os ductos epididimários e os ductos deferentes. Nas fêmeas, os ductos paramesonéfricos formam as tubas e cornos uterinos, o útero parcialmente duplo e a porção cranial da vagina. A porção caudal se origina do seio urogenital e a membrana de oclusão vaginal, da membrana urogenital. Também ficou demonstrado que, a concentração de testosterona sofre grande aumento, dos 25 DG até o final da gestação e que o mesmo não ocorre com o estradiol. Os resultados para detecção de enzimas esteroidogênicas sugerem que, a placenta pode ser o órgão que atua na produção de hormônios andrógenos e pode não realizar a conversão desses hormônios em estrógenos, devido à ausência da enzima responsável por este processo. Por fim, os testículos e ovários também podem contribuir com a produção dos principais andrógenos e o ovário também possui a enzima necessária para a produção de estrógenos. / Galea spixii are rodents that have aroused the interest of researchers because of their peculiar sexual dimorphism, since females have the external genitalia with masculinized characteristics. The aim of the present research was to establish the morphological parameters of the development and sexual differentiation of males and females during the intrauterine period and the possible sources of androgen and estrogen hormones production during pregnancy. Concepts from 30 pregnant females were used. The hormonal concentrations of pregnant were described. Then, the genital organs of the concepts were analyzed macroscopically and microscopically. And, to detect possible sources of androgens and estrogens, placentas, ovaries and testes were subjected to immunological techniques for the detection of steroidogenic enzymes. At 25 days of gestation (DG) the process of sexual differentiation of the gonads (to form the ovaries or testicles) and the external genitalia begins. The genital tubercle undergoes channeling of the urethra at 30 DG to form the penis in males and at 40 DG to form the clitoris of females. In males, the epididymal ducts and the vas deferens differentiate from the mesonephric ducts. In females, the paramesonephric ducts form the uterine tubes and horns, the partially double uterus and the cranial portion of the vagina. The caudal portion originates from the urogenital sinus and the vaginal closure membrane originates from the urogenital membrane. It has also been shown that the testosterone concentration is greatly increased from 25 DG until the end of gestation and that the same does not occur with estradiol. The results for the detection of steroidogenic enzymes suggest that the placenta may be the organ that acts in the production of androgen hormones and may not perform the conversion of these hormones into estrogens due to the absence of the enzyme responsible for this process. Finally, the testicles and ovaries can also contribute to the production of the main androgens and the ovary also has the enzyme necessary for the production of estrogens.
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Utilização do ultrassom para diagnosticar a prenhez e o sexo de fetos de pequenos ruminantes gerados a partir de monta natural e da transferência de embriões frescos, congelados e vitrificados / Use of ultrasound to diagnose pregnancy and fetal sex of small ruminant originating from natural mating and from fresh, frozen and vitrified embryo transfer.

FREITAS NETO, Leopoldo Mayer de 15 February 2010 (has links)
Submitted by (edna.saturno@ufrpe.br) on 2016-10-14T12:17:11Z No. of bitstreams: 1 Leopoldo Mayer de Freitas Neto.pdf: 829417 bytes, checksum: 20a0e805e8a2d62a9b139566d0ef9786 (MD5) / Made available in DSpace on 2016-10-14T12:17:11Z (GMT). No. of bitstreams: 1 Leopoldo Mayer de Freitas Neto.pdf: 829417 bytes, checksum: 20a0e805e8a2d62a9b139566d0ef9786 (MD5) Previous issue date: 2010-02-15 / Conselho Nacional de Pesquisa e Desenvolvimento Científico e Tecnológico - CNPq / In this work, divided into three experiments, the aim was to verify the possibility to diagnose the pregnancy of does and ewes by different pathway access and diagnose the fetuses sex originated by natural mating and transfer of fresh and cryopreserved embryos. The examinations were carried out using an ultrasound scanner equipped with a linear transducer (6.0 and 8.0 MHz) used by transrectal and transabdominal via and a microconvex endocavitary (5.0 and 7.5 MHz) transducer used by transvaginal via. In the first experiment was verified the viability of the ultrasound examination by transretal, transabdominal and transvaginal via to diagnose pregnancy in goats (n = 240) and ewes (n = 320) at days 30th, 45th, 60th and 75th. In does and ewes the ultrasound examination was faster (P < 0.05) on days 30th and 45th of pregnancy, however by transabdominal via was faster on day 60th and 75th. In both species the time of pregnancy diagnose was greater (P < 0.05) on day 30th than the others days while this time was smallest (P < 0.05) at day 75th than day 45th and 60th. Independent of the examination via and the day of pregnancy the average time to diagnose the pregnancy was shorter (P < 0.05) in does than in ewes. Independing of the specie and the day of pregnancy the average time to diagnose the pregnancy by transrectal via was shorter (P < 0.05) than the other vias and the transvaginal via was shorter (P < 0.05) than the transabdominal one. In the second experiment, in order to improve the sexing of Boer fetuses (n = 123) by transrectal ultrasonography, the aim was to identify the migration period of the genital tubercle and its later differentiation into genital structures in fetuses derived from natural mating (TI) and fetus from fresh (TII), frozen (TIII) and vitrified (TIV) embryo transfer collected 7 days after breeding. Migration of the genital tubercle occurred earlier (P < 0.05) in TI (45.21 ± 3.31 days) than in TII (48.50 ± 3.70 days), TIII (48.93 ± 3.61 days) and TIV (48.85 ± 3.23 days). The visualization of the scrotum, prepuce and vulva occurred earlier (P < 0.05) in TI (51.20 ± 2.56; 50.35 ± 1.59; 49.75 ± 1.73 days) than in TII (53.25 ± 2.02; 53.37 ± 1.92; 51.76 ± 2.10 days),TIII (53.37 ± 1.92; 52.31 ± 2.00; 51 ± 78 ± 2.22 days) and TIV (54.06±1.75; 52.46 ± 1.95; 51.91 ± 2.06 days). In the third experiment, in order to improve fetal sexing by ultrasonography in Dorper ewe breed (n = 130), the objective was to identifythe migration period of the genital tubercle and the period of the visualization of external genital structures in fetuses derived from natural mating (TI) and from fresh (TII), frozen (TIII) and vitrified (TIV) embryos transfer collected 7 days after breeding. Migration of the genital tubercle occurred earlier (P < 0.05) in TI (42.21±2.86 days) than in TII (43.98±3.00 days), TIII (44.97±1.83 days) and TIV (44.58±1.97days). The visualization of scrotal bag, prepuce and vulva occurred, respectively, earlier (P < 0.05) in TI (45.22±1.25; 45.95±1.53; 45.01±.103 days) than in TII (48.91±1.92; 48.52±1.41; 47.41±1.41 days), TIII (49.97±1.08; 49.18±2.00; 47.64±1.82 days) and TIV(50.12±1.66; 49.27±1.1.61; 47.93±1.92 days). The results allow to conclude that the pregnancy diagnose may be performed by transrectal, transabdominal and transvaginal via, as well as, that is faster by transrectal via and hat the time for diagnosing is shorterin advanced pregnancy and in goat specie. Is also possible to conclude, taking into consideration the final position of the genital tubercle, that goat fetal sexing can be done from the 55th day onward in fetuses produced by natural mating and from the 60th day onward in fetuses derived from cryopreserved embryos. It can also be concluded that, real-time ultrasonography is a reliable tool for fetal sex determination in sheep after Day 50 of pregnancy taking into account both the location of the genital tubercle and the identification of external genital structures. In ovine species the fetal sexing can be done from the 50th day onward in fetuses produced by natural mating and from the 55th day onward in fetuses derived from cryopreserved embryos. Finally is possible to conclude that real-time ultrasonography is a reliable tool for early pregnancy diagnose in small ruminant as well as that to identify the sex on the first 60 days of pregnancy. / Com este trabalho, dividido em três experimentos, objetivou-se verificar a possibilidade de realizar o diagnóstico de prenhez em cabras e ovelhas por diferentes vias de acesso e sexar fetos originados de monta natural e da transferência de embriões frescos e criopreservados. Os exames foram realizados com um aparelho de ultrassom equipado com um transdutor linear (6,0 e 8,0 MHz) utilizado pelas vias transretal e transabdominal e outro microconvexo (5,0 e 7,5 MHz) endocavitário utilizado por via transvaginal. No primeiro experimento verificou-se a viabilidade do exame ultrassonográfico pelas vias transretal, transabdominal e transvaginal para diagnosticar a gestação de cabras (n = 240) e ovelhas (n = 320) no 30o, 45o, 60o e 75o dia. Nas cabras e ovelhas, o exame ultrassonográfico pela via transretal foi mais rápido (P < 0, 05) no 30o e no 45o dia da gestação, mas, pela via transabdominal foi mais rápido no 60o e no 75o dia. Em ambas as espécies, a duração do diagnóstico de gestação foi maior (P < 0,05) no 30o dia do que nos demais, enquanto que a duração do diagnóstico no 75o dia foi menor (P < 0,05) do que no 45o e 60o. Independentemente da via de exame e do dia da gestação, o tempo médio para diagnosticar a gestação foi menor (P < 0,05) nas cabras do que nas ovelhas. Independentemente da espécie e do dia da gestação, o tempo médio para diagnosticar a gestação pela via transretal foi menor (P < 0,05) do que as demais e o da transvaginal foi menor (P < 0,05) do que o da via transabdominal. No segundo experimento, com a finalidade de aperfeiçoar a sexagem de fetos (n = 123) caprinos da raça Boer por via transretal, procurou-se identificar o período de migração do tubérculo genital e sua diferenciação nas estruturas da genitália de fetos derivados de monta natural (TI) e da transferência de embriões frescos (TII), congelados (TIII) e vitrificados (TIV) colhidos 7 dias após a cobertura. A migração do tubérculo genital ocorreu mais cedo (P < 0,05) no TI (42,21±2,86 dias) do que no TII (43,98±3,00 dias), TIII (44,97±1,83 dias) e no TIV (44,58±1,97 dias). A visibilização da bolsa escrotal, prepúcio e vulva ocorreu precocemente (P < 0,05) no TI (45,22±1,25; 45,95±1,53;45,01±1,03 dias) do que no TII (53,25 ± 2,02; 53,37 ± 1,92; 51,76 ± 2,10 dias), TIII (53,25 ± 2,02; 53,37 ± 1,92; 51.76 ± 2,10 dias) e TIV (54,06±1,75; 52,46 ± 1,95;51,91 ± 2,06 dias). No terceiro experimento, com o propósito de aperfeiçoar a sexagem de fetos (n = 130) ovinos da raça Dorper por via transretal, procurou-se identificar o período de migração do tubérculo genital e sua diferenciação nas estruturas da genitália de fetos derivados de monta natural (TI) e da transferência de embriões frescos (TII), congelados (TIII) e vitrificados (TIV) colhidos 7 dias após a cobertura. A migração do tubérculo genital ocorreu mais cedo (P < 0,05) no TI (45,21 ± 3,31 dias) do que no TII (48,50 ± 3,70 dias), TIII (48.50 ± 3.70 dias) e no TIV (48,85 ± 3,23 dias). A visibilização da bolsa escrotal, prepúcio e vulva ocorreu precocemente (P < 0,05) no TI (51,20 ± 2,56; 50,35 ± 1,59; 49,75 ± 1,73 dias) do que no TII (53,25 ± 2,02; 53,37 ± 1,92; 51,76 ± 2,10 dias), TIII (53,25 ± 2,02; 53,37 ± 1,92; 51.76 ± 2,10 dias) e TIV (54,06±1,75; 52,46 ± 1,95; 51,91 ± 2,06 dias). Os resultados permitem concluir que o diagnóstico de gestação pode ser realizado pelas vias transretal, transabdominal etransvaginal, bem como que é mais rápido pela via transretal, na gestação avançada e na espécie caprina. É também permissível concluir que, com base no posicionamento final do tubérculo genital, é recomendável sexar fetos caprinos provenientes de monta natural somente a partir do 55o dia de prenhez e a partir do 60o dia naqueles derivados da transferência de embriões frescos e criopreservados. Nos ovinos a sexagem fetal já pode ser efetuada a partir do 50o dia de prenhez nos fetos oriundos de monta natural e a partir do 55o dia naqueles originados da transferência de embriões frescos e criopreservados. Ainda é possível concluir que a ultrassonografia em tempo real é uma ferramenta importante para diagnosticar precocemente a prenhez nos pequenos ruminantes, assim como identificar o sexo fetal nos primeiros 60 dias de gestação
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Controle esteroidogênico da diferenciação sexual intrauterina em Galea spixii / Steroidogenic control of intrauterine sexual differentiation in Galea spixii

Amilton Cesar dos Santos 20 December 2016 (has links)
Os Galea spixii são roedores que tem despertado o interesse de pesquisadores devido ao seu peculiar dimorfismo sexual, uma vez que, as fêmeas possuem a genitália externa com características masculinizadas. O objetivo da presente pesquisa foi estabelecer os parâmetros morfológicos do desenvolvimento e diferenciação sexual de machos e fêmeas durante o período intrauterino e as possíveis fontes de produção de hormônios andrógenos e estrógenos durante a gestação. Foram utilizados conceptos provenientes de 30 fêmeas gestantes. Foi descrita a concentração hormonal das gestantes. Em seguida, os órgãos genitais dos conceptos foram analisados macroscopicamente e microscopicamente. E, para detectar possíveis fontes de andrógenos e estrógenos, as placentas, ovários e testículos foram submetidos a técnicas imunológicas de detecção de enzimas esteroidogênicas. Aos 25 dias de gestação (DG) se inicia o processo de diferenciação sexual das gônadas (para formar os ovários ou os testículos) e da genitália externa. O tubérculo genital sofre a canalização da uretra aos 30 DG para formar o pênis nos machos e aos 40 DG para formar o clitóris das fêmeas. Nos machos, a partir dos ductos mesonéfricos, se diferenciam os ductos epididimários e os ductos deferentes. Nas fêmeas, os ductos paramesonéfricos formam as tubas e cornos uterinos, o útero parcialmente duplo e a porção cranial da vagina. A porção caudal se origina do seio urogenital e a membrana de oclusão vaginal, da membrana urogenital. Também ficou demonstrado que, a concentração de testosterona sofre grande aumento, dos 25 DG até o final da gestação e que o mesmo não ocorre com o estradiol. Os resultados para detecção de enzimas esteroidogênicas sugerem que, a placenta pode ser o órgão que atua na produção de hormônios andrógenos e pode não realizar a conversão desses hormônios em estrógenos, devido à ausência da enzima responsável por este processo. Por fim, os testículos e ovários também podem contribuir com a produção dos principais andrógenos e o ovário também possui a enzima necessária para a produção de estrógenos. / Galea spixii are rodents that have aroused the interest of researchers because of their peculiar sexual dimorphism, since females have the external genitalia with masculinized characteristics. The aim of the present research was to establish the morphological parameters of the development and sexual differentiation of males and females during the intrauterine period and the possible sources of androgen and estrogen hormones production during pregnancy. Concepts from 30 pregnant females were used. The hormonal concentrations of pregnant were described. Then, the genital organs of the concepts were analyzed macroscopically and microscopically. And, to detect possible sources of androgens and estrogens, placentas, ovaries and testes were subjected to immunological techniques for the detection of steroidogenic enzymes. At 25 days of gestation (DG) the process of sexual differentiation of the gonads (to form the ovaries or testicles) and the external genitalia begins. The genital tubercle undergoes channeling of the urethra at 30 DG to form the penis in males and at 40 DG to form the clitoris of females. In males, the epididymal ducts and the vas deferens differentiate from the mesonephric ducts. In females, the paramesonephric ducts form the uterine tubes and horns, the partially double uterus and the cranial portion of the vagina. The caudal portion originates from the urogenital sinus and the vaginal closure membrane originates from the urogenital membrane. It has also been shown that the testosterone concentration is greatly increased from 25 DG until the end of gestation and that the same does not occur with estradiol. The results for the detection of steroidogenic enzymes suggest that the placenta may be the organ that acts in the production of androgen hormones and may not perform the conversion of these hormones into estrogens due to the absence of the enzyme responsible for this process. Finally, the testicles and ovaries can also contribute to the production of the main androgens and the ovary also has the enzyme necessary for the production of estrogens.

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