Tesis para optar al Grado de Doctor en Bioquímica / El denominado divisoma bacteriano es un complejo multiproteíco que consta de, al
menos, 12 proteínas esenciales, las cuales se reclutan de forma secuencial e
interdependiente para llevar a cabo el proceso de segregación de los cromosomas,
citoquinesis y separación de las células hijas.
La temporalidad y secuencialidad en la formación del divisoma se ha estudiado
extensamente y se ha descrito que ocurre en dos etapas. Primero ocurre la
polimerización de FtsZ para formar el anillo Z, el que se estabiliza y ancla a la
membrana mediante FtsA y ZipA, esta es la fase temprana y da origen al proto anillo.
La fase tardía consiste en el reclutamiento del resto de las proteínas (FtsEX > FtsK >
FtsQLB > FtsW > FtsI > FtsN) por el proto anillo, el cual actúa como andamio de toda la
maquinaria. Una vez que este complejo multi proteico esta ensamblado, comienza el
proceso de división bacteriana.
Para comprender a cabalidad este complejo, es necesario conocer las interacciones
existentes entre sus componentes. Al recopilar la información publicada sobre estas
interacciones, nos damos cuenta que su descripción ha sido, principalmente, de forma
cualitativa mediante técnicas genéticas y algunas bioquímicas, sin embargo, la
información sobre las afinidades y cooperatividad de las interacciones en el proceso
de ensamblaje del divisoma es casi inexistente. La escasa información que existe se
explica por la dificultad en la purificación de los componentes del divisoma.
En este trabajo se caracterizaron, de forma cuantitativa, las interacciones presentes en
una sub red del divisoma, específicamente en la red de interacciones de FtsEX. Según
los datos publicados hasta la fecha, FtsEX interactúa con FtsZ, FtsA, FtsQ y EnvC,
además se sabe que la unión y hidrólisis de ATP de FtsE es esencial para la división
bacteriana. Se eligió FtsEX pues es un punto clave en el ensamblaje del divisoma, al ser
la primera proteína en ser reclutada que actúa como un conector entre el citoplasma y
el periplasma. Para efectuar esta caracterización mediante técnicas biofísicas se hizo
necesario establecer protocolos de purificación y caracterización de las proteínas a
ser estudiadas, para luego estudiar las interacciones.
La purificación de FtsE se realizó en condiciones desnaturantes, pues el 100 % de esta
aparece como cuerpos de inclusión. Distintas metodologías para obtener FtsE soluble
se probaron sin éxito, por lo que se continúo trabajando en condiciones
desnaturantes. El replegamiento de FtsE se estudió mediante dilución rápida y diálisis
al equilibrio en distintas condiciones de pH, fuerza iónica, aditivos, etc. La única
condición donde se obtuvo FtsE soluble fue en amortiguador acetato 50 mM pH 5. El
replegamiento se siguió por dicroísmo circular, fluorescencia y dispersión de luz y
todo indicó que FtsE adquirió estructura terciaria. Para corroborar la funcionalidad de
FtsE, se estudió su interacción con ATP y ADP mediante termoforesis en micro escala.
Se obtuvo isotermas de unión con ambos nucleótidos con constantes de disociación de
579 y 1394 μM, respectivamente. También se estudió la interacción de FtsE y FtsZ, la
cual está descrita por co-purificación. Esta interacción se ajustó mejor a la ecuación de
Hill con una constante de disociación de 9,1 μM y un coeficiente de Hill de 2,2. Estos
resultados indican que FtsE ha adquirido, al menos, cierto grado de estructura que le
permite interactuar con el resto de los componentes del divisoma.
Se intentó una serie de estrategias para la sobreexpresión y purificación de FtsX
obteniéndose resultados promisorios. La optimización de la sobreexpresión mediante
el clonamiento de FtsE río arriba de FtsX y la sobreexpresión por el método de
autoinducción disminuyó la toxicidad de FtsX. La solubilización de FtsX se logró con
los detergentes CHAPS, colato y DDM. En la purificación en presencia del detergente
DDM, se obtuvo una alta pureza, con un único contaminante.
Finalmente se caracterizó la interacción entre el dominio periplasmático de FtsX
(Xloop) con EnvC (Regulador de amidasas de la división celular), FtsQ y con ella
misma. Estos resultados indican que EnvC interactúa con el monómero de Xloop y con
el dímero de Xloop, con afinidades altas, Kd de 106 y 328 nM respectivamente.
Además Xloop interactúa con FtsQ con una afinidad menor, Kd de 4 μM.
Finalmente, los resultados obtenidos en este trabajo asocian FtsEX en la regulación de
las amidasas involucradas en la remodelación del peptidoglicano en la división celular,
mediante un secuestro de EnvC a la zona del septo. La alta afinidad observada en la
interacción Xloop – ccEnvC sugiere que es un complejo estable, probablemente, se
forme el complejo FtsEX/EnvC previo a la formación del divisoma. FtsE se reclutaría mediante la interacción con FtsZ y además estabilizaría el anillo Z. Por otro lado, la
interacción de Xloop con FtsQ es de menor afinidad con respecto a su interacción con
EnvC sugiriendo una interacción menos estable por esta última. Sin embargo, cabe
destacar que las concentraciones locales, en el proceso de divisón celular, pueden
variar considerablemente ya que la mayoría de las Fts’s son reclutadas al mismo sitio,
aumentando su concentración local. Este podría ser un sistema de control que
utilizaría FtsEX para regular a las amidasas, mediante la intearcción con otros
componentes del divisoma, como podría ser el caso de FtsQ / The so-called bacterial divisome is a multiprotein complex consisting of at least 12
essential proteins, which are recruited sequentially and interdependent to carry out
the process of chromosome segregation, cytokinesis and separation of the daughter
cells.
The timing and sequencing in the formation of divisome has been studied extensively
and has been reported to occur in two stages. First occurs FtsZ polymerization to form
the Z ring, which is stabilized and membrane anchor through ZipA and FtsA, this is the
early stage and gives rise to the proto ring. The late stage involves the recruiting of
other proteins (FtsEX> FtsK> FtsQLB> FtsW> FtsI> FtsN) to the proto ring, which acts
as a scaffold of all machinery. Once this multi-protein complex is assembled, it begins
the process of bacterial division.
To fully understand this complex, it is necessary to know the interactions between its
components. In compiling the information published on these interactions, we realize
that the description has been mainly qualitatively by genetic and biochemical
techniques. However, information on the affinities and cooperativity of interactions in
the assembly process are almost nonexistent. This lack of information is explained by
the difficulty in purifying divisome components.
In this work, the interactions from a sub network of the divisome assembly were
characterized quantitatively, specifically on the network centered on FtsEX. According
to data published to date, FtsEX interacts with FtsZ, FtsA, FtsQ and EnvC, it is also
known that the binding and hydrolysis of ATP by FtsE is essential for bacterial
division. FtsEX was chosen because it is a key point in the assembly of the divisome,
being the first protein to be recruited, and it can acts as a connector between the
cytoplasm and the periplasm. To perform this characterization by biophysical
techniques, it became necessary to establish purification protocols for this proteins,
and then study the interactions.
Purification of FtsE was performed on denatured conditions, as 100% of this protein
is expressed as inclusion bodies. Different methodologies for FtsE expression as soluble were tested without success, so work continued on denatured conditions. FtsE
refolding was studied by rapid dilution and equilibrium dialysis under different
conditions of pH, ionic strength, additives, etc. The only condition, where soluble FtsE
was obtained, was 50 mM acetate buffer pH 5. Refolding was monitored by circular
dichroism, fluorescence and light scattering, proven that FtsE did acquire tertiary
structure. To corroborate the functionality of FtsE, it interactions with ATP and ADP
was measured by MicroScale Thermophoresis. Binding isotherms were obtained with
both nucleotides with dissociation constants of 579 and 1394 uM, respectively. The
interaction of FtsE and FtsZ, which was previously described by co-purification, was
also studied. This interaction was best fitted to the Hill equation with a dissociation
constant of 9.1 uM and a Hill coefficient of 2.2. These results indicate that FtsE did
acquire tertiary structure that lets it interact with the other components of divisome.
A number of strategies for overexpression and purification of FtsX were attempted,
yielding promising results. Cloning FtsE upstream of FtsX and overexpression by the
method of auto-induction diminished FtsX toxicity. FtsX solubilization was achieved
with the detergents CHAPS, cholate and DDM. Purification in the presence of
detergent DDM gave the best result with a single contaminant protein.
Finally the interaction between the periplasmic domain of FtsX (Xloop) with EnvC
(regulator of cell division amidases), FtsQ and with itself was studied. These results
indicate that EnvC interacts with Xloop monomer and dimer, with high affinities, Kd
106 nM and 328 nM respectively. Furthermore, Xloop interacts with FtsQ with lower
affinity, Kd 4 uM.
Finally, the results obtained in this work showed that FtsEX recruits and regulates the
amidases involved in the remodeling of peptidoglycan in cell division, by a
sequestration EnvC to the area of the septum. The high affinity interaction observed
between Xloop - ccEnvC suggests that a stable complex FtsEX / EnvC is formed prior
to the recruitment of the divisome. FtsE is recruited by interacting with FtsZ and also
stabilize the ring Z. It was also showed that Xloop interacts with FtsQ with lower
affinity with respect to it interaction with EnvC suggesting a less stable complex.
However, it is noteworthy that the local concentration of the proteins from the
divisome can vary considerably, since most Fts's are recruited to the same site, increasing their local concentration. This could be a control system on how FtsEX
regulate amidases activities, increasing the concentration of FtsQ to compete for the
Xloop which will release EnvC to activate the amidases / Conicyt; Fondecyt
| Identifer | oai:union.ndltd.org:UCHILE/oai:repositorio.uchile.cl:2250/140691 |
| Date | January 2016 |
| Creators | Maturana Middleton, Daniel |
| Contributors | Monasterio Opazo, Octavio, Lagos Mónaco, Rosa |
| Publisher | Universidad de Chile |
| Source Sets | Universidad de Chile |
| Language | Spanish |
| Detected Language | Spanish |
| Type | Tesis |
| Rights | Attribution-NonCommercial-NoDerivs 3.0 Chile, http://creativecommons.org/licenses/by-nc-nd/3.0/cl/ |
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