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Au cours de son développement depuis la cellule unique jusqu’à la forme adulte, l’embryon passe par de nombreuses étapes de morphogenèse. L'harmonie entre les cellules au cours de ces processus est assurée par l’intégration spatiale des signaux externes qui assurent la cohérence des polarités internes et externes des cellules. Ce travail de thèse se concentre sur la façon dont les cellules intègrent les informations spatiales dans la définition de leur polarité au cours de grandes transformations morphologiques comme la transition épithélium-mésenchyme et la dissémination des cellules tumorales. Nous avons utilisé la position du centrosome comme un indicateur de la polarité cellulaire interne en raison de son rôle actif dans l'organisation des microtubules et donc dans l'orientation du transport intra-cellulaire. La polarité corticale a été inférée à partir de la répartition spatiale des adhérences cellule-cellule (ACC) et cellule-matrice (ACM).Dans la première partie, nous avons étudié l'effet de l'amplification du nombre de centrosomes, une caractéristique fréquente dans les cellules tumorales, sur l’adhérence inter-cellulaire. L'amplification des centrosomes dans les cellules de la glande mammaire a conduit à la rupture des adhérences inter-cellulaires ainsi qu’à la genèse de protubérances cellulaire invasive. Cependant le matériel centrosomal étant plus développé, de nombreux microtubules supplémentaires émanait de ces clusters de centrosomes surnuméraires. L'utilisation de modèles cellulaires in vitro et de conditions de culture contrôlées ont révélées que la simple amplification des centrosomes est suffisante pour moduler le destin de cellules transformées et les rendre invasives. Cette étude a révélé que les mécanismes régissant l’orientation la polarité interne des cellules sont liés à l’arrangement spatial de la polarité corticale et que la diaphonie entre les deux perturbe la physiologie du tissu au point d’induire la formation de métastases tumorales.La deuxième partie de l'étude a porté sur l'exploration de la transition épithélium-mésenchyme (EMT). Nous avons étudié le rôle potentiel des mécanismes de régulation de la polarité pour diriger la précision des mouvements cellulaire au cours de l’EMT. Le remodelage des adhérences inter-cellulaires jouant un rôle central au cours de l’EMT, nous avons supposé qu'il était couplé à des changements de polarité interne. Nous avons suivi le positionnement du centrosome dans les cellules épithéliales et dans les cellules dans lesquelles l’EMT était induite par stimulation au TGFb. La libération des cellules mésenchymateuses de leur confinement nous a montré que la séparation des cellules après l’EMT était dépendante de l’inversion de polarité interne dans ces cellules. Ces résultats suggèrent que la dispersion des cellules observée pendant la formation du mésoderme au cours de la gastrulation impliquent un renversement actif et finement contrôlée du couplage entre l’axe de polarité interne et l’asymétrie des deux types d’adhérences cellulaires.Suite à l’étude de ces deux projets impliquant des dispersions cellulaires, nous avons développé un dispositif pour permettre le criblage de médicaments contre les dérèglements cellulaires impliqués dans la formation des métastases. Nous avons à nouveau utilisé un modèle simplifié de paires de cellules sur des micropattern pour détecter la capacité de dispersion des cellules suite à des stimulations externes comme celle induisant l’EMT. Le test, qui permet de mesurer le degré de séparation des cellules à l’aide d’une seule image, a été validé sur quatre lignées de cellules épithéliales différentes. Le dispositif final a été adapté à un format de plaque 96 puits en collaboration avec l’entreprise Cytoo afin de permettre des criblages à haut contenu. Ce kit a ensuite été validé en testant des médicaments connus contre l’EMT. / Development from single cell embryo to multicellular adult form of organism involves tremendous morphogenesis. The well defined and highly controlled morphonogenetic processes are crucial at every stage of development including gastrulation, organogensis, wound healing and tissue maintenance. The necessary harmony between cells for these processes is achieved by integration of internal and external polarity cues. This thesis work is focused on understanding how cells integrate polarity cues to drive morphogenetic event such as of Epithelial to mesenchymal transition (EMT) and cancer metastasis. We used centrosome position as an indicator of internal cell polarity due to its active role in organization of microtubules and orientation of internal traffic of endocytosed and secreted proteins; while cortical polarity was inferred by polarized distribution of cell-cell adhesions (CCA) and cell-matrix adhesions (CMA). In the first part, we studied effect of centrosome amplification, which is very common in human cancer; on CCA. Inducible centrosome amplification in mammary gland cells led to destabilization of CCA alongwith generation of invasive cell protrusions. Using a minimal model of tissue; confined on micropatterns, we demonstrated that cells with amplified centrosome correctly oriented their internal polarity axis like normal cells although increased centrosomal protein and peri-centriolar material emanated higher centrosomal microtubules. Use of in vitro models of cell lines and controlled culture conditions revealed that mere amplification of centrosome was sufficient to drive cell fate for cancer-like events in the absence of any additional external growth signals capable of affecting cortical polarity. This study revealed that internal polarity cues interact with cortical polarity signals and the crosstalk between the two governs the physiological state of the cell during transformation events like cancer metastasis. The second part of the study focused on exploring how internal polarity during EMT is modulated to drive precise spatial movements during development. Cell adhesion remodelling being central to EMT, we hypothesized that it was coupled to internal polarity changes. We monitored centrosome position in epithelial and in cells induced for EMT by TGFb and found that nucleus-centrosome axis was reversed. This phenomenon of polarity reversal strongly suggested that internal polarity cues and positioning of organelles is coupled to signals that polarize CCA and CMA distribution. A shift in the force balance between CCA and CMA was observed upon EMT and suggested that CMA forces dominated in mesenchymal cells and release of cells from confinement clearly revealed that ability of cell separation was dependent upon their internal polarity. These results demonstrated that scattering events observed during mesoderm formation during gastrulation or metastasis events in cancer involve active and tightly controlled reversal of internal polarity axis coupled to cortical polarity of cells. From the understanding of above two projects involving cancer-like scattering phenomenon, we developed a product to allow robust drug screening against cancer drugs. We once again used simplified two-cell model on micropattern geometries to develop an assay to detect scattering ability of cells after events like EMT. The assay was validated by EMT transformation of 4 different epithelial cells lines and detection of their scattering ability by single time point picture assay. We used internuclear distance between the cell-pair as the main parameter for scoring the scattering index of cells with possibility of automated image processing. The final product was manufactured in 96-well plate format by industrial collaborator Cytoo for high content screening. Preliminary validation using drugs against EMT constituted proof of principle for the product.

La nucléoline est une des protéines les plus abondantes des nucléoles. Ses fonctions ne sont cependant pas restreintes à la biogénèse des ribosomes. En absence de nucléoline, un phénotype d’amplification du nombre de centrosomes en mitose, associé à des fuseaux multipolaires a été récemment rapporté. Notre étude vise à comprendre l’implication de la nucléoline dans l’apparition de ce phénotype et notamment ses conséquences sur l’organisation des microtubules.Par immunofluorescence, nous mettons en évidence que la fraction centrosomale de la nucléoline est spécifiquement associée au centriole mature en interphase, alors qu’en mitose seule une forme phosphorylée y est détectée.En interphase, les cellules déplétées en nucleoline présentent une amplification de leurs centrioles immatures, entourés par un réseau anormal de péricentrine, dénotant une perte de structuration de la matrice péricentriolaire. De plus, une désorientation du réseau microtubulaire causée par une capacité de nucléation ralentie et une perte d’ancrage des microtubules au centrosome mature est observée. Par des expériences de co-immunoprécipitation avec la tubuline γ, un lien avec le complexe d’initiation de la nucléation des microtubules est dévoilé.En conclusion, les résultats de ma thèse révèlent que structurellement la nucléoline est associée au centriole mature des cellules en interphase et que fonctionnellement elle stimule la nucléation des microtubules et participe à leur ancrage au centrosome mature pour orienter le réseau microtubulaire en interphase. La nucléoline pourrait ainsi être un des acteurs de la synchronicité entre centrosomes et nucléoles pour la régulation du cycle cellulaire. / Nucleolin is an abundant non-ribosomal protein of the nucleolus. Nevertheless its functions are not restricted to ribosome biogenesis. Without nucleolin, a phenotype of abnormally high centrosome numbers was recently reported in mitosis, associated with multipolar spindle formation. The purpose of our study is to understand nucleolin’s involvement in the appearance of this phenotype and specifically consequences on microtubule network organisation. By immunofluorescence, visual evidences of a centrosomal fraction of nucleolin are provided, specifically associated with the mature centriole of interphase cells. In mitosis, only a phosphorylated form of nucleolin is detected at the spindle poles.In interphase, nucleolin depleted cells exhibit immature centriole amplification surrounded by an abnormal mesh of pericentrine, showing a loss of pericentriolar matrix structuration. Furthermore, in most nucleolin depleted cells, a complete disorganisation of microtubule network is observed, caused by a slower microtubule nucleation capacity and a loss of microtubule anchoring at the mature centriole. Using co-immunoprecipitation with γ-tubulin, a major centrosomal protein, a link with the microtubule nucleation complex was highlighted.Taken together my thesis results reveal that in interphase cells, nucleolin is structurally associated with the mature centriole, and functionally stimulates microtubule nucleation and participates in their anchoring at the mature centrosome to orient microtubule network. Thus, nucleolin could be a major actor in the synchronicity between centrosome and nucleoli for cell cycle regulation.

Les cils/flagelles sont des organites conservés au cours de l’évolution qui peuvent permettre le mouvement de fluide, la locomotion ainsi que la chimiosensation, mécanosensation et la signalisation intracellulaire. Le cil est constitué d’un corps basal (à la base du cil) et d’un axonème émergeant à la surface cellulaire et entouré de membrane. L’axonème est constitué de neuf doublets de microtubules et une paire centrale dans le cas d'un cil motile. Leur dysfonctionnement peut conduire à des syndromes génétiques (ciliopathies) pouvant être fatale. Mon travail de thèse porte sur la caractérisation d’une nouvelle protéine centrosomale baptisé FOR20 (FOP Related protein of 20 kDa). Cette protéine très conservée possède un domaine LisH, permettant l’homodimérisation. FOR20 est retrouvée au centrosome et dans des satellites péricentriolaires. Les satellites sont des structures non membranaires enrichies en PCM1 se déplaçant le long des microtubules grâce à des moteurs, apportant certaines protéines au centrosome. L'utilisation de protéines mutées montre que la partie amino terminale de FOR20, incluant un domaine LisH fonctionnel, est responsable de cette localisation. L’inhibition d’expression de FOR20 dans des cellules ciliées, RPE1, diminue le pourcentage de cellules ciliées ainsi que la taille du cil. La distribution des satellites est perturbée et la protéine PCM1 est déplacée de la fraction insoluble à la fraction soluble en Triton-X100. Nos résultats suggèrent que FOR20 est une protéine impliquée dans la régulation de l’interaction des satellites avec les microtubules et les moteurs ainsi que dans le contrôle du transport d’éléments ciliaires au corps basal. / Cilia and flagella are evolutionary conserved organelles that generate fluid movement and locomotion, and play roles in chemosensation, mechanosensation and intracellular signalling. In complex organisms, cilia are highly diversified, which allows them to perform various functions. However, they retain a 9+0 or 9+2 microtubules structure connected to a basal body. Here, we describe FOR20 (FOP-related protein of 20 kDa), a previously uncharacterized and highly conserved protein that is required for normal formation of a primary cilium. FOR20 is found in PCM1-enriched pericentriolar satellites and centrosomes. FOR20 contains a Lis1-homology domain that promotes self-interaction and is required for its satellite localization. Inhibition of FOR20 expression in RPE1 cells decreases the percentage of ciliated cells and the length of the cilium on ciliated cells. It also modifies satellite distribution, as judged by PCM1 staining, and displaces PCM1 from a detergent-insoluble to a detergent-soluble fraction. The subcellular distribution of satellites is dependent on both microtubule integrity and molecular motor activities. Our results suggest that FOR20 could be involved in regulating the interaction of PCM1 satellites with microtubules and motors. The role of FOR20 in primary cilium formation could therefore be linked to its function in regulating pericentriolar satellites. A role for FOR20 at the basal body itself is also possible.

Le centrosome est le centre organisateur des microtubules dans les cellules animales, il nucléé les microtubules interphasiques ainsi que le fuseau mitotique. Les centrosomes sont produits par duplication, mécanisme rigoureusement régulé au cours du cycle cellulaire. En effet, un centrosome comporte deux centrioles qui se dupliquent une fois par cycle cellulaire. Des erreurs de duplication conduisant à plus de deux centrosomes induisent la formation de fuseaux multipolaires et provoquent des défauts de ségrégation des chromosomes. Chez la levure Schizosaccharomyces pombe, un organisme modèle pour l’étude de la division cellulaire, les homologues des centrosomes sont les SPBs (pour Spindle Pole Body). Une structure annexe spécifique liée aux SPBs est appelée demi-pont (quand les SPBs ne sont pas dupliqués) puis pont (quand elle relie les deux SPBs dupliqués). Les deux principaux composants du pont chez la levure S. pombe sont Cdc31 et Sfi1. Sfi1 est une protéine linéaire formée de répétitions en hélice α formant des sites de liaison pour la Centrine/Cdc31. Sfi1 s’assemble en réseau de molécules parallèles interagissant avec le SPB via leur domaine N-terminal. Lors de la première partie de ma thèse, j’ai démontré que Sfi1 est requis pour la duplication et la séparation des deux SPBs. Dans la première partie de ma thèse, je me suis intéressée aux fonctions de Sfi1 chez la levure. Cette étude a permis de démontrer que Sfi1 est un composant du demi-pont et qu’il est essentiel pour la duplication des SPBs et l’assemblage d’un fuseau bipolaire. De plus, nous avons déterminé que le pont est dupliqué en fin de mitose. Enfin, nous avons aussi montré que la déstabilisation du pont menant à sa rupture en mitose, dépend de la phosphorylation de Cdc31 par la kinase mitotique Cdk1. Lors de la seconde partie de ma thèse, je me suis intéressée au complexe Sfi1/Centrine dans les cellules humaines. J’ai confirmé que Sfi1 est localisée aux centrioles. De plus, j’ai montré que la déplétion de Sfi1 dans les cellules RPE1, conduit à une perte de localisation de la Centrine, suggérant soit un défaut de recrutement, soit une déstabilisation. De plus, en absence de Sfi1, les cellules RPE1 ne sont plus capables de former de cil primaire. Ce résultat suggère que Sfi1 et la Centrine sont requis pour la ciliogénèse. Enfin, j’ai aussi démontré que la déplétion deSfi1 induit un arrêt de cycle cellulaire dans les cellules non tumorales RPE1. Dans les cellules cancéreuses, HeLa, le cycle n’est pas arrêté mais j’ai pu observer une prolongation du temps de mitose. En conclusion mes travaux montrent que bien que la fonction de Sfi1/Centrin ne soit pas conservée, le complexe reste essentiel pour l’intégrité structurale et fonctionnelle du centrosome. / The centrosome is the main microtubule organizing center. It nucleates and organizes interphase microtubule and contributes to the assembly of the bipolar mitotic spindle. To do so, the centrosome, present in one copy at the beginning of the cell cycle, duplicates to produce a second copy. The duplication process is tightly controlled and regulated since centrosome over-duplication can lead to multipolar mitotic spindles and promote genome instability and tumorigenesis. The duplication of the yeast centrosome, the SPB (Spindle pole body), begins with the duplication of the half bridge. This appendage is composed of Sfi1/Cdc31 complex organized in a parallel array attached to the core SPB. SPB duplication relies on the assembly of a second array of Sfi1/Cdc31, anti-parallel to the first one, creating thereby an assembly site for the new SPB. Therefore Sfi1 is essential for SPB duplication and our work defined the timing of half-bridge duplication and some of the regulatory mechanisms that favor bridge splitting to release duplicated centrosomes and allow spindle assembly at mitotic onset. Sfi1 and Cdc31/Centrins are conserved in human cells where the centrosome is composed of two centrioles surrounded by the pericentriolar material. Centrins are concentrated in the distal end of centrioles. Sfi1 has also been localized to centrioles, but its function remained unknown. Thus, we started investigating Sfi1 function in human cells. We found that Sfi1 depletion leads to a decrease in Centrin recruitment to the centrioles. It also leads to a cell cycle arrest in G1 in RPE1 cells, an event previously observed in presence of defects in centriole biogenesis. In HeLa cells where the cell cycle is not affected, Sfi1 depletion leads to a mitotic delay. Moreover, Sfi1 depletion leads to cilium assembly. To conclude, these results altogether point towards a role of human Sfi1 in centriole biogenesis.

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<p>Microtubules often adopt non-centrosomal arrays in differentiated tissues, where they are important for providing structure to the cell and maintaining polarity. Although the formation and organization of centrosomal arrays has been well-characterized, little is known about how microtubules form non-centrosomal arrays.</p><p>In the mouse epidermis, centrosomes in differentiated cells lose their microtubule-anchoring ability through the loss of proteins from the centrosome. Instead, microtubules are organized around the cell cortex. The cell-cell adhesion protein desmoplakin is required for this organization. Our model is that desmoplakin recruits microtubule-anchoring proteins like ninein to the desmosome, where they subsequently recruit and organize microtubules.</p><p>To test this model, we confirmed that the microtubule-binding proteins Lis1, Ndel1, and CLIP170 are recruited by desmoplakin to the cell cortex. Furthermore, by creating an epidermis-specific conditional Lis1 knockout mouse, I found that Lis1 is required for cortical microtubule organization. Surprisingly, however, Lis1 is also required for desmosome stability. This work reveals essential desmosome-associated components that control cortical microtubule organization and unexpected roles for centrosomal proteins in epidermal function.</p><p>Although Lis1 is required for microtubule organization, it is not sufficient. I created a culture-based system to determine what other factors may be required for cortical organization for microtubules. My work reveals that stabilization of the microtubules is sufficient to induce their cortical organization. Functionally, cortical microtubules are important for increasing the mechanical integrity of cell sheets by engaging adherens junctions. In turn, tight junction activity is increased. Therefore, I propose that cortical microtubules in the epidermis are important in forming a robust barrier by cooperatively strengthening each cell-cell junction.</p><p>To determine whether desmosomes play similar roles in simple epithelia as stratified epithelia, I examined intestinal epithelial-specific conditional desmoplakin conditional knockout mice. Unexpectedly, I found that desmoplakin is not required for cell-cell adhesion and tissue integrity in the small intestine. Furthermore, it does not organize intermediate filaments. Desmoplakin is required, however, for proper microvillus architecture. </p><p>Overall, my studies highlight novel tissue-specific roles for desmosomes, in particular desmoplakin, in organizing and integrating different cytoskeletal networks. How desmoplakin's function is regulated in each tissue will be a new interesting area of research.</p> / Dissertation

Contexte: Le centrosome est un petit organite bien connu pour son rôle dans l'établissement du fuseau bipolaire pendant la division cellulaire. Les déficiences de la fonction du centrosome donnent souvent lieu à des maladies humaines, y compris le cancer et la formation de kystes rénaux. Nous sommes intéressés à étudier la fonction d'une nouvelle protéine centrosomale nommée CEP78, identifiée dans un criblage protéomique pour de nouveaux composants centrosomaux. Méthodes et résultats : Le traitement des cellules avec le nocodazole, un agent qui dépolymérise spécifiquement les microtubules cytoplasmiques mais pas les microtubules stabilisés du centrosome, a montré que CEP78 est un composant centrosomal stable. La colocalisation de cette protéine avec d'autres marqueurs centrosomaux tels que CEP164, SAS6, Centrine, tubuline polyglutamylée et POC5, à différentes phases du cycle cellulaire a indiqué que CEP78 est précisément à l'extrémité distale des centrioles, mères et filles. Il existe deux pointts CEP78 au cours de l’interphase et les cellules passent par la mitose, procentrioles maturent, et le nombre de points de CEP78 augmente à 4 par cellule et, à la fin de la télophase chaque cellule fille possède 2 points CEP78. La caractérisation des domaines fonctionnels de CEP78 a montré que des répétitions riches en leucine sont nécessaires pour la localisation centrosomale de la protéine. En outre, nous avons constaté que la surexpression de CEP78 ne change pas le nombre de mères/procentrioles mais diminue le nombre et l'intensité des points de CEP170 (protéine d'appendice sous-distal) sans diminution du niveau d'expression de cette protéine. D'autres études ont montré qu'il n'y a pas d'interaction entre ces deux protéines. Enfin, la surexpression de CEP78 protège des microtubules contre la dépolymérisation en présence de nocodazole, ce qui suggère qu'il possède la capacité de lier les microtubules. Conclusion : Nos résultats suggèrent que CEP78 est destiné à l'extrémité distale des centrioles matures par ses répétitions riche en lecuine, où il pourrait être impliqué dans la maturation ou la régulation de l'assemblage ou de la rénovation de l'appendice sous-distal centriolaire, une structure connue dans la nucléation des microtubules et d'ancrage. Comprendre la fonction de Cep78 contribuera à éclaircir le rôle du centrosome dans le cycle cellulaire. / Background: The centrosome is a tiny organelle well-known for its role in establishing the bipolar spindle during cell division. Defects in centrosome function often give rise to human diseases including cancer and kidney cyst formation. We are interested in studying the function of one novel centrosomal protein named CEP78, identified in a proteomic screen for novel centrosomal components. Methods and results: Treatment of cells with nocodazole, a microtubule-depolymerizing agent that specifically depolymerizes cytoplasmic microtubules but not the stabilized centrosome microtubules, showed that CEP78 is a stable centrosomal component. Colocalization of this protein with other centrosomal markers such as CEP164, SAS6, Centrin, Polyglutamylated tubulin and POC5 at different phases of the cell cycle indicated that CEP78 specifically localizes to the distal end of the mother and daughter centrioles. There are 2 CEP78 dots during the interphase and as the cells go through mitosis, procentrioles mature, and the number of CEP78 dots increases to 4 dots per cell and by the end of telophase each daughter cell has 2 CEP78 dots. Characterization of CEP78 functional domains showed that Leucine-rich repeats are necessary for centrosomal localization of the protein. In addition, we found that overexpression of CEP78 did not change the number of centrioles and centrosomes but decreased the number and intensity of CEP170 dots (sub-distal appendage protein) without a decrease in the expression level of this protein. Further studies showed that there is no interaction between these 2 proteins. Finally, overexpression of CEP78 protects microtubules from depolymerization in the presence of nocodazole, suggesting its ability to bind microtubules. Conclusion: Our findings suggest that CEP78 is targeted to the distal end of mature centrioles via its lecuine-rich repeats, where it could be involved in centriolar maturation or regulation of sub-distal appendage assembly and/or remodeling, a structure known to nucleate and anchor microtubules. Understanding the function of CEP78 will shed light on the role of the centrosome in cell cycle.

Cette thèse tente d'aborder, avec quelques détours, deux questions centrales concernant le<br />centrosome des vertébrés : son rôle dans la motilité cellulaire et son rôle dans le cycle de<br />division cellulaire.<br />Après une introduction en trois parties (un tour d'horizon dans une optique historique, un<br />exposé détaillé des connaissances actuelles, puis une réflexion plus générale sur des bases<br />phylogénétiques), deux travaux sont présentés : une étude des rôles respectifs des deux<br />centrioles du centrosome des cellules de vertébrés, puis une étude du comportement<br />particulier du centrosome dans ces cellules en sortie de mitose.<br />L'ensemble de ce travail se fonde sur un outil précieux : l'établissement de lignées cellulaires<br />qui expriment de manière stable la centrine 1 humaine couplée à la GFP, ce qui constitue un<br />excellent marqueur des centrioles et de leur stade de maturation. En effet, le centrosome des<br />vertébrés contient deux structures microtubulaires appelée centrioles qui se reproduisent en<br />synchronie avec le cycle de division cellulaire par un mécanisme de duplication, un nouveau<br />centriole étant assemblé à proximité de chaque centriole présent. Il y a donc dans chaque<br />cellule, après une mitose, un nouveau et un ancien centriole aussi appelés centriole parental<br />ou centriole père et centriole fils.<br />La première étude, après avoir succinctement défini le comportement des centrioles dans les<br />différentes phases du cycle, se concentre plus précisément sur la phase G1 pendant laquelle il<br />a pu être observé que les deux centrioles peuvent transitoirement se séparer de plus de dix<br />microns. L'un des deux centrioles, qui a pu être identifié comme le centriole le plus jeune, a<br />une mobilité parfois importante, alors que le plus ancien, qui est associé à l'aster de<br />microtubules par des appendices qui sont caractéristiques de son ancienneté reste près du<br />centroïde de la cellule. La différence d'abondance des microtubules à proximité des deux<br />centrioles a pu être attribuée à une régulation différentielle de l'ancrage : le centriole le plus<br />ancien capture les microtubules qui sont nucléés dans un rayon de quelques microns autours<br />de lui, alors que le centriole fils, qui a une capacité de nucléation équivalente, a une capacité<br />d'ancrage des microtubules réduite. Ainsi, quand les deux centrioles sont éloignés l'un de<br />l'autre, de nombreux microtubules libres peuvent être observés dans la cellule, au contraire,<br />quand ils sont proches, la plupart des microtubules cellulaires sont ancrés sur le centrosome<br />(et en particulier sur le centriole père). Nous avons donc proposé que la cellule puisse<br />modifier son réseau microtubulaire en modulant la distance intercentriolaire.<br />La deuxième étude présentée porte sur un comportement particulier du centriole parental en<br />fin de mitose : après que les cellules se sont étalées, mais alors qu'elles sont encore reliées par<br />un pont cytoplasmique, les deux centrioles, dans chaque cellule fille, se séparent puis le<br />centriole parental quitte sa position centrale et stationne pendant 10 à 30 minutes à proximité<br />du pont cytoplasmique intercellulaire. Le pont se pince alors de chaque côté de la pièce<br />intermédiaire puis se rompt lorsque le centriole parental regagne sa position près du noyau.<br />Nous avons pu déterminer que le pincement du pont correspondait au détachement des<br />faisceaux de microtubules qu'il contient. Nous avons ensuite, à l'aide de drogue qui<br />dépolymérisent les microtubules, suggéré l'existence d'un contrôle de la présence du centriole<br />parental dans le pont. Nous avons étudié des cas de cellules acentriolaires et pu mettre en<br />évidence des défauts liés à la cytocinèse. Enfin, il nous est apparu, à la suite d'expériences sur<br />des substrats plus ou moins adhésifs que l'adhésion de la cellule à son substrat est un des<br />paramètres clé de la régulation de cet événement de fin de mitose.<br />Des interprétations plus spéculatives sont proposées dans les discussions qui suivent l'exposé<br />des résultats, ainsi que des expériences pour les tester.