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Caractérisation moléculaire et cellulaire du rôle de la poly(ADP-ribose) polymérase 3 (PARP3) dans la maintenance de l'intégrité du génome / Molecular and cellular characterization of the role of the poly(ADP-ribose) polymerase 3 (PARP3) in the maintenance of genome integrityBeck, Carole 12 October 2016 (has links)
La poly(ADP-ribosyl)ation est une modification post-traductionnelle des protéines par les poly(ADP-ribose) polymérases (PARPs). PARP3 a été identifiée comme un nouvel acteur de la réparation des cassures double-brin (DSBs). Nous avons évalué la contribution de PARP3 dans les différentes voies de réparation (HR, C-NHEJ ou A-EJ). Les résultats obtenus définissent PARP3 comme un modulateur de l’étape de résection d’ADN simple-brin permettant d’engager le choix de la voie de réparation. Nous avons montré que PARP3 favorise le recrutement du complexe Ku70/Ku80 aux sites de cassures et module la balance BRCA1/53BP1. Ces deux événements limitent l’étape de réparation de la voie HR et A-EJ et oriente la réparation vers la voie du C-NHEJ. Par immunoprécipitation de la chromatine, nous avons étudié les conséquences de l’absence de PARP3 sur les modifications d’histones, connues pour moduler la décision entre les différentes voies de réparation. Nos résultats actuels ne nous ont pas permis d’établir de lien entre PARP3 et les modifications d’histones en réponse aux DSBs. Nous avons toutefois observé qu’en absence de dommages, l’absence de PARP3 induit un enrichissement de H3K36me2 une marque d’histone connue pour réguler les gènes transcriptionnellement actifs. Dans un second projet, nous avons étudié l’impact de l’absence de PARP3 sur la viabilité cellulaire et la progression tumorale de cellules cancéreuses mutées en BRCA1. Nous avons montré par des approches in vitro et in vivo que l’absence de PARP3 induit une diminution de la survie et de la prolifération cellulaire plus marquée, une amplification exacerbée des centrosomes, ainsi qu’un ralentissement plus important de la progression tumorale, faisant de PARP3 une cible prometteuse en thérapie du cancer. / Poly(ADP-ribosyl)ation is a post-translational modification of proteins catalyzed by poly(ADPribose) polymerases (PARPs). PARP3 was identified as a novel actor of the double-strand break (DSBs) repair pathway. We evaluated the contribution of PARP3 in these repair pathways(HR, C-NHEJ ou A-EJ). Our results defined PARP3 as a modulator of the single strand DNA resection process which plays a role in driving the repair pathway choice. We showed that PARP3 enhances the recruitement of the Ku70/Ku80 complexe to damaged sites and modulates the BRCA1/53BP1 balance. These two events prevent the DNA end resection step initiating HR and A-EJ and drives the repair towards the C-NHEJ. By chromatin immunoprecipitation, we studied the consequences of the absence of PARP3 on histone modifications, known to modulate the decision of the DSBs repair pathways. Our current results didn’t allow us to establish a link between PARP3 and histone modifications in response to DSBs. However, in absence of DNA damage and PARP3, we observed an accumulation of H3K36me2, a histone mark known to regulate transcriptionally active genes. In a second project, we studied the impact of the absence of PARP3 on cell viability and tumor progression in breast cancer cell lines mutated in BRCA1. By in vitro and in vivo approaches, we showed that the absence of PARP3 induces an important decrease in cell survival and proliferation, an increase in centrosomal amplification and a strong delay in tumor progression. The roles of PARP3 in both cellular response to DNA damage and mitotic progression introduce PARP3 as a possible promising therapeutic target in cancer therapy.
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Perturbation des profils épigénétiques suite à une perte temporaire du maintien de la méthylation de l’ADN dans les cellules embryonnairesBertrand-Lehouillier, Virginie 08 1900 (has links)
Chez l’embryon précoce, une vague de reprogrammation majeure survient et permet de
réinitialiser les profils de méthylation d’ADN de l’ensemble du génome. Lors de cette
reprogrammation, les régions différentiellement méthylées (DMRs) (i.e., gènes
empreintes) doivent toutefois être protégées de la déméthylation par une action continue
de DNMT1 (Méthyltransférase d’ADN 1) pour assurer le développement adéquat de
l’épigénome du fœtus. Sachant que l’induction d’une perte temporaire d’expression de
Dnmt1 dans un modèle de cellules souches embryonnaires de souris entraîne la perte
permanente des patrons de méthylation d’ADN aux régions DMRs et DMR-like, mon
projet de recherche vise à comprendre pourquoi ces régions sont incapables de retrouver
leurs patrons de méthylation d’ADN initiaux. Notre hypothèse est qu’une adaptation
épigénétique (i.e. réarrangement erroné de certaines modifications d’histones) survient aux
régions régulatrices de l’expression des gènes (promoteurs et enhancers) et empêche
directement ou indirectement le retour au paysage épigénétique initial aux régions
affectées. L’objectif du projet est donc de précisément définir comment la perte temporaire
de Dnmt1 remodèle le paysage épigénétique aux régions promotrices (H3K4me3,
H3K27me3, H3K27ac, H3K4me1, H3K9me3, méthylation d’ADN) et comment les
adaptations épigénétiques sont associées avec des changements de l’expression des gènes
(ex : gènes des régions DMRs et DMRs-like). / In early embryos, a major reprogramming wave occurs and permits to reset DNA
methylation profiles genome-wide. During the reprogramming wave, differentially
methylated regions (DMRs) (imprinted genes) must be protected from demethylation by
the continuous action of DNMT1 (DNA Methyltransferase 1) to ensure the proper
development of the foetal epigenome. As the induction of a temporary loss of Dnmt1
expression in a mouse embryonic stem cell model leads to permanent losses of DNA
methylation at DMR and DMR-like regions, my project aims to understand why those
regions are unable to re-establish their initial DNA methylation patterns. Our hypothesis is
that an epigenetic adaptation (erroneous rearrangement of certain histone modifications)
occurs at regulatory regions controlling gene expression (promoters and enhancers) and
impede directly or indirectly the affected regions to return to their initial epigenetic
landscape. The goal of this project is thus to define how the temporary loss of Dnmt1
remodels the epigenetic landscape at promoter regions (H3K4me3, H3K27me3, H3K27ac,
H3K4me1, H3K9me3, DNA methylation) and how the epigenetic adaptations are
associated with changes in gene expression (ex: genes in DMR and DMR-like regions).
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