Co-immunoprecipitation (co-IP) followed by proteomic analysis was employed to examine the phosphoenolpyruvate carboxylase (PEPC) interactome of developing castor oil seed (COS) endosperm. Earlier studies suggested that immunologically unrelated 107-kDa plant-type and 118-kDa bacterial-type PEPCs (p107/PTPC and p118/BTPC, respectively) are subunits of an unusual ~910-kDa hetero-octameric Class-2 PEPC complex of developing COS. The current results confirm that a tight physical interaction occurs between p118 and p107 since p118 quantitatively co-IP’d with p107 following elution of COS extracts through an anti-p107-IgG immunoaffinity column. No PEPC activity or immunoreactive PTPC or BTPC polypeptides were detected in the corresponding flow-through fractions. Although BTPCs lack the N-terminal phosphorylation site characteristic of PTPCs, Pro-Q Diamond Phosphoprotein staining, immunoblotting with phospho-(Ser/Thr) Akt substrate IgG, and phosphate-affinity PAGE demonstrated that the co-IP’d p118 was significantly phosphorylated at unique Ser and/or Thr residue(s). The co-IP of p118 and p107 was not influenced by their phosphorylation status. As p118 phosphorylation appeared unchanged 48 h following elimination of photosynthate supply due to COS depodding, the signaling mechanisms responsible for photosynthate-dependent p107 phosphorylation differ from those controlling p118’s in vivo phosphorylation. A third PEPC polypeptide of ~110-kDa (p110; RcPPC1) co-IP’d with p118 and p107 when depodded COS was used. Analysis of RcPpc1’s full-length cDNA sequence revealed p110’s identity with PTPCs, but that a pair of unique amino-acid substitutions occurs in its N-terminal sequence that may render p110 non-phosphorylatable in vivo. The plastidial pyruvate dehydrogenase complex (PDCpl) was identified as a novel PEPC interactor. Subcellular fractionation indicated that p118 and p107 are strictly cytosolic, but that PDCpl is targeted to both the cytosol and leucoplast of developing COS. Thus, a putative cytosolic metabolon involving PEPC and PDCpl could function to channel carbon from phosphoenolpyruvate to acetyl-CoA and/or to recycle CO2 from PDCpl to PEPC. / Thesis (Master, Biology) -- Queen's University, 2007-09-26 15:57:52.216

Nociception is the sensory nervous system that detects harmful stimuli including excessive heat, cold, toxic chemicals, and noxious mechanical stimulations. Transient receptor potential (TRP) channels are a group of evolutionarily conserved ion channels consisting of 4 subunits, each with 6 transmembrane spans, and detect a variety of external and internal nociceptive stimuli. Due to their critical roles in nociception, it is essential to understand the mechanisms that regulate TRP channels and subsequent nociception. Here, I investigated two distinct types of regulation of Drosophila transient receptor potential cation channel A1 (TrpA1): regulation via the expression of different TrpA1 isoforms, and via its binding with associated proteins. I found that one of the TrpA1 isoforms, TrpA1(E), inhibits the thermal responses of other TrpA1 isoforms in vitro. I also identified potential TrpA1 binding partners through Co- immunoprecipitation (Co-IP) and mass spectrometry analysis. These binding partners need further validation and characterization through biochemical, cellular, and behavioral assays to illustrate their roles in nociception, and may serve as potential drug targets for chronic pain.

Aufgrund der vielfältigen metabolischen Prozesse und Funktionen von Mitochondrien finden durch beide mitochondriale Membranen zahlreiche Transportprozesse statt. Es wird weitgehend angenommen, dass der Transfer von metabolischen Intermediaten durch die äußere Membran von den zahlreichen Porinporen gewährleistet wird. Im Gegensatz dazu sind in der inneren Membran spezifische Transportproteine für die Translokationsprozesse verantwortlich. Neben dem gut untersuchten Porinmolekül (Por1p) gibt es in der Hefe S. cerevisiae unter respiratorischen Bedingungen zwei weitere abundante, aber funktionell unbekannte Proteine in der äußeren Membran von Mitochondrien - Om14p und Om45p -, deren molekular-biologische Charakterisierung Gegenstand dieser Arbeit war. Mit drei unabhängigen Methoden (2D BN - SDS-PAGE, Co-IP und TAP) konnte gezeigt werden, dass die beiden Proteine Om14p und Om45p zusammen mit Por1p einen Proteinkomplex in der äußeren Membran ausbilden, wobei Por1p eine von Om14p und Om45p unabhängige Porenstruktur ausbildet. Bei Bedarf, möglicherweise über Phosphorylierungen signalisiert, binden Om14p und Om45p an diese Struktur, wobei Om45p dabei der direkten Interaktion von Om14p mit Por1p bedarf. Die Identifikation von Interaktionspartnern des Fusionsproteins Om14p-TAP durch Einsatz einer präparativen TAP mit anschließender massenspektrometrischer Analyse sowie die Untersuchungen der Effekte von OM14- und/oder OM45- Gendeletionen auf das mitochondriale Proteom mit einem 2D DIGE-Verfahren führten zur Aufstellung von funktionalen Zusammenhängen des Proteinpaares Om14p/Om45p. Mit Wachstumsuntersuchungen von Deletionsmutanten in Gegenwart von in den Mitochondrien toxisch wirkenden Substanzen sowie durch ein in dieser Arbeit entwickeltes Testverfahren zur Bestimmung des mitochondrialen ATP-Flusses, konnten die funktionalen Hypothesen für die Proteine Om14p und Om45p initial verifiziert werden. Zusammengefasst unterstützen die Daten dieser Arbeit die Idee von einem hochgradig flexiblen System der Mitochondrien, zur Gewährleistung von effizienten Transportvorgängen durch beide Membranen. Eine koordinierte Bindung der Porinpore an die spezifischen Transporter der inneren Membran wird wahrscheinlich durch die Aktivität des Proteinpaares Om14p/Om45p vermittelt. In diesem Zusammenhang könnten beide Proteine als eine Art Lizenzierungsfaktor fungieren und die Positionierung der Porinpore an die entsprechenden Proteine der inneren Membran erzeugen. Dadurch würde ein effektives System für den Austausch von metabolischen Intermediaten und Substraten der mitochondrialen Atmungskette entstehen. Ebenfalls durch diese Arbeit nicht auszuschließen ist die Vorstellung, dass die Proteine Om14p und Om45p einen Einfluss auf die spezifischen Transportproteine der inneren Membran oder die Porinpore der äußeren Membran ausüben. Phosphatrest-Übertragungen, die zu Konformationsänderungen oder Porenöffnungen führen könnten, sind beispielsweise vorstellbar. Die Stoffwechseladaption einer Zelle bei einem diauxic shift ist durch einen verstärkten mitochondrialen Import von Metaboliten, Co-Faktoren und Proteinen sowie häufigerer mitochondrialer Teilungsprozesse charakterisiert. Om14p und Om45p sind bei einem Wechsel zu nicht-fermentativen Bedingungen verstärkt präsent. Diese beiden Proteine könnten der Hefe einen entscheidenden Vorteil bei der Synchronisierung der genannten Prozesse liefern, indem sie eine verbesserte Erreichbarkeit bzw. eine Veränderung der Selektivität von bereitgestellten Kanälen bzw. Transportproteinen in beiden mitochondrialen Membranen bewirken.

Here, we validate novel protein interactors of TCF7L1 (also known as TCF3), a downstream transcription factor in the Wnt/β-catenin signaling pathway, from an initial protein interaction screen that utilized the BioID system in mouse embryonic stem cells. The BioID-TCF7L1 screen identified multiple proteins including several transcription factors and numerous epigenetic regulators. Notably, SALL4, a key embryonic stem cell factor belonging to the SPALT family of transcription factors was validated to interact with TCF7L1 through Proximity Ligation Assay (PLA), and Co-Immunopreciptation (Co-IP). Analysing mRNA transcriptomic signatures of TCF7L1-null mEScs and SALL4 overexpressing mESCs, we observed similarly increased output of the pluripotency-gene, Tbx3, suggesting a transcriptionally opposing function between TCF7L1 and SALL4. Furthermore, we identified that SALL4 also interacted with TCF7, suggesting that SALL4 may interact with all four members of the TCF/LEF transcription factor family to regulate Wnt targets. This work further validates the utility and effectiveness of screening transcription factor interactors through the BioID system and provides important insights into SALL4 mediated Wnt regulation through the TCF/LEFs. / Thesis / Master of Science (MSc) / The biology of cells is highly complex. The genes within are under tight regulation to promote balance that is critical to the growth and status of the cell. Cells communicate with one another to support this balance through molecule secretion signaling which dictates biology. Understanding the complex biology within cells is critical, and therefore here we study one of many signaling pathways known as the Wnt Signaling Pathway. This work contributes to the knowledge of Wnt signaling by validating the interaction of proteins that dictate the onset or offset of important genes in mouse embryonic stem cells.

The transcription factor Krüppel homolog 1 (Kr-h1) is crucial in multiple reproductive processes of Aedes aegypti mosquitoes, including previtellogenesis, vitellogenesis, and oogenesis. This study explores the interaction between Kr-h1 and its potential associated proteins (KAPs), with a specific focus on the dimerization partner (DP-1), and how this interaction regulates gene expression pathways critical for mosquito reproduction. Utilizing RNA interference (RNAi), the research identifies DP-1 as a significant regulator of follicle growth post-eclosion (PE), highlighting its vital role in the mosquito reproductive regulatory pathway. The experimental approach included RNAi-mediated knockdown of DP-1, accompanied by evaluations using quantitative PCR (qPCR), Western blotting (WB), co-immunoprecipitation (Co-IP), follicle length measurement, and egg counting to assess the role of DP-1 in reproductive functions. For the first time, the inhibition of DP-1 expression was found to significantly impede A. aegypti follicular development. The elucidation of the mechanistic roles of Kr-h1 and DP-1 provides valuable insights that could lead to innovative strategies for mosquito population control and effective disease vector management. / Master of Science in Life Sciences / Mosquitoes can spread serious insect-borne diseases such as dengue, Zika, and malaria, etc. These diseases can infect hundreds of millions of individual and cause around a million of death annually. This study focuses on a specific mosquito species, Aedes aegypti, which is a major carrier of these diseases. To manage their populations and reduce the spread of these diseases, scientists are constantly seeking new methods to control their reproduction. Chemical insecticides are one of the most efficient and widely used strategies. However, these insecticides face significant challenges, including the development of resistance in mosquito populations and the potential damage to non-target species to affect the ecosystem. To address this issue, the development of new insecticides is crucial. We can identify new targets to pave the way to research novel effective insecticides. Inside mosquitoes, there are various proteins that help control their ability to reproduce. One of these proteins is called Krüppel homolog 1 (Kr-h1). Kr-h1 plays a crucial role in the development and reproductive processes of mosquitoes. Our research looked at how Kr-h1 interacts with other types of protein to control mosquito reproduction. Through various experiments, including gene expression analysis and protein studies, we found that DP-1 is essential for the proper development of mosquito eggs. This insight helps us understand more about the biological processes and hormonal pathways during mosquito reproduction, therefore provide greater opportunity to develop insecticides to reduce their populations and the spread of the diseases they carry.

Aufgrund der vielfältigen metabolischen Prozesse und Funktionen von Mitochondrien finden durch beide mitochondriale Membranen zahlreiche Transportprozesse statt. Es wird weitgehend angenommen, dass der Transfer von metabolischen Intermediaten durch die äußere Membran von den zahlreichen Porinporen gewährleistet wird. Im Gegensatz dazu sind in der inneren Membran spezifische Transportproteine für die Translokationsprozesse verantwortlich. Neben dem gut untersuchten Porinmolekül (Por1p) gibt es in der Hefe S. cerevisiae unter respiratorischen Bedingungen zwei weitere abundante, aber funktionell unbekannte Proteine in der äußeren Membran von Mitochondrien - Om14p und Om45p -, deren molekular-biologische Charakterisierung Gegenstand dieser Arbeit war. Mit drei unabhängigen Methoden (2D BN - SDS-PAGE, Co-IP und TAP) konnte gezeigt werden, dass die beiden Proteine Om14p und Om45p zusammen mit Por1p einen Proteinkomplex in der äußeren Membran ausbilden, wobei Por1p eine von Om14p und Om45p unabhängige Porenstruktur ausbildet. Bei Bedarf, möglicherweise über Phosphorylierungen signalisiert, binden Om14p und Om45p an diese Struktur, wobei Om45p dabei der direkten Interaktion von Om14p mit Por1p bedarf. Die Identifikation von Interaktionspartnern des Fusionsproteins Om14p-TAP durch Einsatz einer präparativen TAP mit anschließender massenspektrometrischer Analyse sowie die Untersuchungen der Effekte von OM14- und/oder OM45- Gendeletionen auf das mitochondriale Proteom mit einem 2D DIGE-Verfahren führten zur Aufstellung von funktionalen Zusammenhängen des Proteinpaares Om14p/Om45p. Mit Wachstumsuntersuchungen von Deletionsmutanten in Gegenwart von in den Mitochondrien toxisch wirkenden Substanzen sowie durch ein in dieser Arbeit entwickeltes Testverfahren zur Bestimmung des mitochondrialen ATP-Flusses, konnten die funktionalen Hypothesen für die Proteine Om14p und Om45p initial verifiziert werden. Zusammengefasst unterstützen die Daten dieser Arbeit die Idee von einem hochgradig flexiblen System der Mitochondrien, zur Gewährleistung von effizienten Transportvorgängen durch beide Membranen. Eine koordinierte Bindung der Porinpore an die spezifischen Transporter der inneren Membran wird wahrscheinlich durch die Aktivität des Proteinpaares Om14p/Om45p vermittelt. In diesem Zusammenhang könnten beide Proteine als eine Art Lizenzierungsfaktor fungieren und die Positionierung der Porinpore an die entsprechenden Proteine der inneren Membran erzeugen. Dadurch würde ein effektives System für den Austausch von metabolischen Intermediaten und Substraten der mitochondrialen Atmungskette entstehen. Ebenfalls durch diese Arbeit nicht auszuschließen ist die Vorstellung, dass die Proteine Om14p und Om45p einen Einfluss auf die spezifischen Transportproteine der inneren Membran oder die Porinpore der äußeren Membran ausüben. Phosphatrest-Übertragungen, die zu Konformationsänderungen oder Porenöffnungen führen könnten, sind beispielsweise vorstellbar. Die Stoffwechseladaption einer Zelle bei einem diauxic shift ist durch einen verstärkten mitochondrialen Import von Metaboliten, Co-Faktoren und Proteinen sowie häufigerer mitochondrialer Teilungsprozesse charakterisiert. Om14p und Om45p sind bei einem Wechsel zu nicht-fermentativen Bedingungen verstärkt präsent. Diese beiden Proteine könnten der Hefe einen entscheidenden Vorteil bei der Synchronisierung der genannten Prozesse liefern, indem sie eine verbesserte Erreichbarkeit bzw. eine Veränderung der Selektivität von bereitgestellten Kanälen bzw. Transportproteinen in beiden mitochondrialen Membranen bewirken.

La localisation des ARNm par transport dirigé joue un rôle dans le développement, la motilité cellulaire, la plasticité synaptique et la division cellulaire asymétrique. Chez la levure Saccharomyces cerevisiæ, la localisation d’ARNm est un phénomène dont les mécanismes de régulation sont conservés auprès de nombreux autres organismes. Lors de la division de la levure, plus d’une trentaine de transcrits sont localisés par transport actif à l’extrémité du bourgeon de la cellule-fille. Parmi ceux-ci, l’ARNm ASH1 est le mieux caractérisé et constitue le modèle utilisé dans cette étude. Pour exercer sa fonction, la protéine Ash1 doit être produite uniquement après la localisation de l’ARNm ASH1. Pour ce faire, les mécanismes de régulation de la traduction de l’ARNm ASH1 empêchent son expression durant le transport. Ce projet de recherche vise à étudier les mécanismes de régulation de la traduction de l’ARNm ASH1 par les répresseurs traductionnels connus, soit Khd1, Puf6 et Loc1. Les études antérieures se sont penchées sur ces facteurs de manière individuelle. Cependant, dans cette étude, nous avons exploré la présence d’une collaboration entre ceux-ci. Ainsi, nous avons voulu déterminer si les répresseurs traductionnels peuvent être intégrés en une seule voie de régulation de la traduction de l’ARNm ASH1. De plus, nous avons cherché à identifier le mécanisme de recrutement des répresseurs traductionnels sur l’ARNm ASH1, qui correspond au point initial des voies de régulations de l’ARNm ASH1. Nos résultats montrent que les répresseurs traductionnels de l’ARNm ASH1, soit Khd1 et Puf6, font partie d’une même voie de régulation de la traduction. Le rôle du facteur nucléaire Loc1 dans la voie de régulation de la traduction, quant à elle, a été examinée à partir d’expériences permettant l’étude du mécanisme de recrutement des répresseurs traductionnels dans le noyau. Ainsi, nos travaux montrent que Puf6 et Loc1 sont associés de manière ARN-dépendant avec la machinerie de transcription, notamment au facteur d’élongation de la transcription Spt4-Spt5/DSIF. Par ailleurs, notre laboratoire a précédemment montré que la localisation nucléaire de la protéine de liaison à l’ARN She2 est essentielle au recrutement des facteurs Loc1 et Puf6 sur l’ARNm ASH1. Des expériences d’immunoprécipitation de la chromatine (ChIP) supportent l’hypothèse que le recrutement de Loc1 est essentiel à celui de Puf6, qui s’effectue ultérieurement. Ainsi, à partir des résultats de cette étude et des résultats publiés précédemment dans notre laboratoire, nous avons élaboré un modèle de recrutement coordonné des facteurs She2, Loc1 et Puf6 sur l’ARNm ASH1 naissant. De manière générale, cette étude a permis d’établir la présence d’une seule voie de régulation de la traduction de l’ARNm ASH1 et une meilleure connaissance du recrutement des facteurs de répression traductionnelle sur celui-ci. / Directed transport mRNA localization play a role in the development, the cell motility, the synaptic plasticity and asymmetric cellular division. In the yeast Saccharomyces cerevisiæ, this regulation mechanism is conserved among many other species. During yeast cell division, around thirty mRNA are actively localized at the bud tip in the daughter cell. ASH1 mRNA is the best known among them and constitutes the model used in this study. In this model, Ash1 expression is possible only after proper localization of its mRNA. In order to do so, ASH1 mRNA translation is repressed by translational repressors during its active transport. This project investigates the mechanism of ASH1 mRNA translational regulation that is carried out by the translational repressors Khd1, Puf6 and Loc1. Previous studies characterized the action of these factors individually. However, in this study, we now explored the possibility of a collaboration between them. Thus, we sought to determine if these translational repressors are part of the same ASH1 mRNA translational regulation pathway. In addition, we tried to identify the mechanisms of recruitment of these translational repressors on ASH1 mRNA, the molecular mechanisms that initiates this process. In this work, we show that the cytoplasmic translational repressors Khd1 and Puf6 are part of the same ASH1 mRNA translational regulation pathway. In this pathway, the role of the nuclear translational factor Loc1 was determined by the analysis of translational factors recruitment on ASH1 in the nucleus. We demonstrate that Puf6 and Loc1 interact in an RNA-dependent manner with the transcription machinery, via the transcription elongation factor Spt4-Spt5/DSIF. Finally, chromatin immunoprecipitation (ChIP) assays support the model that Loc1 recruitment to nascent ASH1 mRNA is essential for the subsequent recruitment of Puf6 to this transcript. With the results of this study and others previously done in the lab, we elaborated a recruitment model for the She2, Loc1 and Puf6 proteins on the nascent ASH1 mRNA. In conclusion, this study has established that the translational repressors Khd1, Puf6 and Loc1 are part of the same ASH1 mRNA translational regulation pathway and allowed a better understanding of the mechanism of recruitment of translational repressors on their target mRNA.