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Etude de la physiopathologie du récepteur FcgammaRIIB dans les lymphomes B malins non-HodgkiniensRibeyron, Juliana 21 December 2006 (has links) (PDF)
Le récepteur de basse affinité pour les fragments Fc des immunoglobulines G, FcgammaRIIB, joue un rôle clé dans la régulation négative des réponses immunes. Il est capable d'inhiber les fonctions cellulaires B induites par le BCR, ainsi que à induire un processus de mort cellulaire, encore très peu caractérisée dans la littérature. Récemment, un rôle potentiel de FcgammaRIIB dans la tumorigenèse a été identifié. En particulier, la dérégulation de l'expression de FcgammaRIIB suite à des translocations chromosomiques a été rapportée dans des cas de lymphomes folliculaires. Nous avons, ainsi étudié les conséquences du recrutement des récepteurs FcgammaRIIB dans des lignées de lymphome B. Nous montrons que le co-recrutement de récepteurs FcgammaRII à l'aide d'anticorps anti-FcgammaRII (FLI 8.26) induit la mort cellulaire de cellules de lymphome B, mais n'induit pas la mort des lymphocytes B normaux. Ce processus apoptotique dans les cellules tumorales B est caspase dépendant (libération du cytochrome c, clivage de la caspase-9, activation de la caspase-3) et indépendant (libération d'AIF). Nous montrons que la phosphorylation des récepteurs FcgammaRIIB est un événement précoce dans la voie de signalisation apoptotique. De plus, le traitement par FLI 8.26 a induit l'expression de la protéine HSP27. Nos résultats ont montré pour la première fois les mécanismes de mort cellulaire FcgammaRIIB dépendante dans les lymphomes B humains. Nous suggérons que la mort cellulaire FcgammaRIIB dépendante pourrait ainsi, être mise à profit en thérapeutique.
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ROLE OF FDCs AND FDC ACTIVATION IN PROMOTING HUMORAL IMMUNITY INCLUDING RESPONSES TO T-DEPENDENT ANTIGENS IN THE ABSENCE OF T CELLSEl, Sayed Rania 16 June 2009 (has links)
Follicular dendritic cells (FDCs) reside in primary B-cell follicles and in the light zones of germinal centers (GCs) in secondary follicles, where their dendrites interdigitate forming extensive networks intimately interacting with B-cells. In GCs, FDCs can be found at the edges attached to the supporting reticular fibers. They trap and arrange immune complexes (ICs) in vivo and in vitro in a periodic manner with 200–500Å spacing and provide both antigen-specific and non-specific accessory signals to B-cells. FDCs exist in resting and activated states, with two characteristically different phenotypes. In their activated state, FDCs upregulate the expression of accessory molecules and cytokines important in the FDC-B cell interaction in GCs. We sought to determine the mechanisms influencing the transition of FDCs from a resting to an activated state in GCs and their impact on T-cell dependent (TD) and independent (TI)-GC reactions (GCRs). We found that IC-FDC interactions via FDC-FcgammaRIIB induce the upregulation of FDC-FcgammaRIIB, -ICAM-1, and -VCAM-1, at both the protein and mRNA levels. We also reported for the first time the expression of TLR-4 on FDCs. Moreover, engagement of FDC-TLR4 with LPS activated NF-kappaB, up-regulated expression of important FDC-accessory molecules, including FcgammaRIIB, ICAM-1, and VCAM-1, and enhanced FDC accessory activity in promoting recall IgG responses. Moreover, IC-activated FDCs produced IL-6 and FDC-IL-6 promoted GCRs, somatic hypermutation (SHM) and IgG production. Further, we reported that binding of FDCs to collagen coated surfaces induced restoration of their dendritic processes and networks in vitro. In addition, we designed an FDC-supported in vitro model capable of induction and assessment of primary human antibody responses to protein antigens characterized by class-switching and affinity maturation. Uniquely, we generated TI immune responses to TD protein Ags in the complete absence of T cell help in vivo and in vitro. In the presence of FDC-associated second signals such as BAFF and C4BP, FDC- FcgammaRIIB-periodically trapped-ICs induced the production of Ag-specific IgM, GC-development and plasmablast-differentiation in anti-Thy-1-pretreated nude mice. Purified murine and human B cells cultured in vitro with IC-bearing FDCs also showed the production of antigen–specific IgM within just 48 h.
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