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Assessing the Preservation Potential of Biogenic Features in Pre-Neogene Tufas and Travertines – Applications to ExobiologyRichardson, Justin 03 June 2005 (has links)
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Characterization of Friction-stir Riveting AA5754Wang, Zixi January 2014 (has links)
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SPIRITUAL ENGAGEMENT AND DEPRESSIVE SYMPTOMS IN GRANDMOTHERS: A 6-YEAR LONGITUDINAL STUDYGivens, Sarah Elizabeth 02 June 2017 (has links)
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The Development, Characterization, and Evaluation of Quaternized Poly(4-Vinylpyridine)-Based Films for the Spectroelectrochemical SensorConklin, Sean Devol January 2004 (has links)
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Innovation and the Family Firm: Leadership, Mindsets, Practices and TensionsIngram, Amy E. 19 September 2011 (has links)
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Determining the Variance and Distribution of Quantified Microstructure in α+β Processed Ti-6Al-4VNoble, Margaret Laura 03 February 2014 (has links)
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AN SEM INVESTIGATION INTO THE EFFECTS OF CLINICAL USE ON HEAT-TREATED NICKEL-TITANIUM ROTARY ENDODONTIC FILESBurke, Thomas January 2016 (has links)
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Examination of Polymeric Foam as an On-Board Vehicular HPR Hydrogen Storage MediaBanyay, Gregory A. 25 September 2006 (has links)
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Characterization of Pseudomonas fluorescens BiofilmBlankemeier, Andrew R. 06 September 2011 (has links)
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Implicación del glicocálix en la fisiología espermática de mamíferos: estudio comparadoRobles-Gómez, Laura 27 May 2022 (has links)
El glicocálix espermático es una estructura altamente compleja desde el punto de vista estructural, composicional y funcional. En este contexto, la presencia y localización de los componentes que conforman el glicocálix espermático ha sido descrita en diferentes especies de mamíferos utilizando mayoritariamente lectinas. De igual forma, se han registrado cambios en los patrones de unión a lectinas durante eventos fisiológicos del espermatozoide como la capacitación o la reacción acrosómica. El objetivo de este trabajo fue caracterizar los sitios de unión a lectinas en espermatozoides de diferentes especies de mamíferos y describir los cambios que se producen durante ciertos eventos fisiológicos como la capacitación o la reacción acrosómica. En una primera fase, se identificaron los patrones de unión a lectinas en el delfín mular (Tursiops truncatus) antes y después de la capacitación in vitro. Como resultados, se obtuvo que los patrones de unión mayoritarios para las lectinas Peanut agglutinin (PNA) y Wheat germ agglutinin (WGA) cambiaban tras la capacitación in vitro. Por el contrario, los patrones de unión mayoritarios para las lectinas Aleuria aurantia agglutinin (AAA) y Concanavalin A (Con A) no sufrieron cambios tras la capacitación. En una segunda fase, se analizaron los sitios de unión para las lectinas PNA, WGA, AAA, Con A y Pisum sativum agglutinin (PSA) en espermatozoides de cerdo (Sus scrofa) antes y después de la capacitación in vitro y tras la inducción de la reacción acrosómica, después de la incubación durante 1 y 4 h en un medio capacitante. De esta forma, los patrones de unión a lectinas cambiaron mayoritariamente en aquellos espermatozoides sometidos a la inducción de la reacción acrosómica tras 4 h de incubación en un medio capacitante. En la tercera fase, se utilizó una técnica novedosa mediante microscopía electrónica de barrido de emisión de campo (FE-SEM) para evaluar los cambios cuantitativos y cualitativos en los sitios de unión a la lectina Con A tras la capacitación in vitro durante 1 y 4 h en espermatozoides humanos. Como resultado, se registró una disminución progresiva y significativa de los sitios de unión a Con A a lo largo del tiempo de capacitación y una redistribución hacia la zona apical de la región acrosomal. La metodología anteriormente mencionada fue utilizada para valorar los cambios en los sitios de unión de la lectina AAA en el espermatozoide humano durante la cuarta fase. De esta forma, se observó una disminución progresiva de los sitios de unión a AAA durante la capacitación in vitro.
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